Please wait a minute...
Frontiers of Medicine

ISSN 2095-0217

ISSN 2095-0225(Online)

CN 11-5983/R

Postal Subscription Code 80-967

2018 Impact Factor: 1.847

Front. Med.    2017, Vol. 11 Issue (3) : 349-358    https://doi.org/10.1007/s11684-017-0571-2
REVIEW
Strategies for preventing peritoneal fibrosis in peritoneal dialysis patients: new insights based on peritoneal inflammation and angiogenesis
Zhen Zhang, Na Jiang, Zhaohui Ni()
Department of Nephrology, Ren Ji Hospital, School of Medicine, Shanghai Jiao Tong University, Shanghai 200127, China
 Download: PDF(263 KB)   HTML
 Export: BibTeX | EndNote | Reference Manager | ProCite | RefWorks
Abstract

Peritoneal dialysis (PD) is an established form of renal replacement therapy. Long-term PD leads to morphologic and functional changes to the peritoneal membrane (PM), which is defined as peritoneal fibrosis, a known cause of loss of peritoneal ultrafiltration capacity. Inflammation and angiogenesis are key events during the pathogenesis of peritoneal fibrosis. This review discusses the pathophysiology of peritoneal fibrosis and recent research progress on key fibrogenic molecular mechanisms in peritoneal inflammation and angiogenesis, including Toll-like receptor ligand-mediated, NOD-like receptor protein 3/interleukin-1β, vascular endothelial growth factor, and angiopoietin-2/Tie2 signaling pathways. Furthermore, novel strategies targeting peritoneal inflammation and angiogenesis to preserve the PM are discussed in depth.

Keywords peritoneal dialysis      peritoneal fibrosis      inflammation      angiogenesis     
Corresponding Author(s): Zhaohui Ni   
Just Accepted Date: 21 July 2017   Online First Date: 09 August 2017    Issue Date: 29 August 2017
 Cite this article:   
Zhen Zhang,Na Jiang,Zhaohui Ni. Strategies for preventing peritoneal fibrosis in peritoneal dialysis patients: new insights based on peritoneal inflammation and angiogenesis[J]. Front. Med., 2017, 11(3): 349-358.
 URL:  
https://academic.hep.com.cn/fmd/EN/10.1007/s11684-017-0571-2
https://academic.hep.com.cn/fmd/EN/Y2017/V11/I3/349
Fig.1  Schematic diagram showing the structure of normal peritoneum and peritoneal fibrosis. The left side of the figure: The peritoneum of a healthy subject is lined with a continuous monolayer of mesothelial cells (MCs, ) with multiple microvilli on the apical surface. The submesothelium is composed of connective tissue with blood vessels ( ) and few resident fibroblasts ( ). The right side of the figure: Peritoneal fibrosis is characterized by mesothelial denudation, decreased microvilli density, thickening of the submesothelium attributed to increased matrix protein deposition, infiltration of myofibroblasts, and neoangiogenesis. In this process, peritoneal inflammation and the release of inflammatory factors ( ) are observed. Myofibroblasts may originate from activated fibroblasts ( ), MCs that have undergone epithelial mesenchymal transdifferentiation (EMT) ( ), or circulating cells such as fibrocytes ( ).
Fig.2  Selective molecular mechanisms of peritoneal inflammation and angiogenesis and their contribution to peritoneal fibrosis. TLR ligands activate redundant pathways leading to the activation of ERK1/2, MAPKs, NF-kB, and JNK and inflammation. Activation of NLRP3 inflammasome triggers IL-1b release and inflammation. VEGF, when bound to VEGFR-2, induces the phosphorylation of phospholipase (PL) C-g, PI3K, MAPK, and the Src family and expression of COX-2, which are involved in angiogenesis. Angiopoietin-1 and angiopoietin-2 bind to Tie1/Tie2 and activate the PI3K/Akt and ABIN-2 pathways. They play an important role in angiogenesis. NLRP3, NOD-like receptor protein 3; IL, interleukin; ERK, extracellular signal-regulated kinase; JNK, c-Jun N-terminal kinase; NF-kB, nuclear factor-kB; COX-2, cyclooxygenase-2; PI3K, phosphatidylinositol-3-kinase; m-TOR, mammalian target of rapamycin; Angs, angiopoietins; ABIN-2, A20 binding inhibitor of NF-kB-2; P, phosphate.
1 Nagy JA. Peritoneal membrane morphology and function. Kidney Int Suppl 1996; 56: S2–S11
pmid: 8914047
2 Li PK, Chow  KM, Van de Luijtgaarden  MW, Johnson DW ,  Jager KJ ,  Mehrotra R ,  Naicker S ,  Pecoits-Filho R ,  Yu XQ, Lameire  N. Changes in the worldwide epidemiology of peritoneal dialysis. Nat Rev Nephrol 2017; 13(2): 90–103
https://doi.org/10.1038/nrneph.2016.181 pmid: 28029154
3 Loureiro J, Gónzalez-Mateo  G, Jimenez-Heffernan J, Selgas R ,  López-Cabrera M ,  Aguilera Peralta A. Are the mesothelial-to-mesenchymal transition, sclerotic peritonitis syndromes, and encapsulating peritoneal sclerosis part of the same process? Int J Nephrol 2013; 2013: 263285 PMID: 23476771
https://doi.org/ 10.1155/2013/263285
4 Garosi G, Cappelletti  F, Di Paolo N . Fibrosis and sclerosis: different disorders or different stages? Contrib Nephrol 2006; 150: 62–69
https://doi.org/10.1159/000093503 pmid: 16720993
5 Williams JD, Craig  KJ, Topley N ,  Von Ruhland C ,  Fallon M ,  Newman GR ,  Mackenzie RK ,  Williams GT ; Peritoneal Biopsy Study Group. Morphologic changes in the peritoneal membrane of patients with renal disease. J Am Soc Nephrol 2002; 13(2): 470–479
pmid: 11805177
6 Kaneko K, Hamada  C, Tomino Y . Peritoneal fibrosis intervention. Perit Dial Int 2007; 27(Suppl 2): S82–S86
pmid: 17556336
7 Schilte MN, Celie  JW, Wee PM ,  Beelen RH ,  van den Born J . Factors contributing to peritoneal tissue remodeling in peritoneal dialysis. Perit Dial Int 2009; 29(6): 605–617
pmid: 19910560
8 Baroni G, Schuinski  A, de Moraes TP ,  Meyer F ,  Pecoits-Filho R . Inflammation and the peritoneal membrane: causes and impact on structure and function during peritoneal dialysis. Mediators Inflamm 2012; 2012: 912595 PMID: 22547910
https://doi.org/ 10.1155/2012/912595
9 Aroeira LS, Aguilera  A, Sánchez-Tomero JA, Bajo MA ,  del Peso G ,  Jiménez-Heffernan JA ,  Selgas R ,  López-Cabrera M . Epithelial to mesenchymal transition and peritoneal membrane failure in peritoneal dialysis patients: pathologic significance and potential therapeutic interventions. J Am Soc Nephrol 2007; 18(7): 2004–2013
https://doi.org/10.1681/ASN.2006111292 pmid: 17568021
10 Bertoli SV, Barone  MT, Vago L ,  Bonetto S ,  De Vecchi A ,  Scalamogna A ,  Barbiano di Belgiojoso G. Changes in peritoneal membrane after continuous ambulatory peritoneal dialysis—a histopathological study. Adv Perit Dial 1999; 15: 28–31
pmid: 10682067
11 Devuyst O, Margetts  PJ, Topley N . The pathophysiology of the peritoneal membrane. J Am Soc Nephrol 2010; 21(7): 1077–1085
https://doi.org/10.1681/ASN.2009070694 pmid: 20448020
12 Yung S, Chan  TM. Intrinsic cells: mesothelial cells—central players in regulating inflammation and resolution. Perit Dial Int 2009; 29(Suppl 2): S21–S27
pmid: 19270220
13 Topley N, Jörres  A, Luttmann W ,  Petersen MM ,  Lang MJ ,  Thierauch KH ,  Müller C ,  Coles GA ,  Davies M ,  Williams JD . Human peritoneal mesothelial cells synthesize interleukin-6: induction by IL-1β and TNFα. Kidney Int 1993; 43(1): 226–233
https://doi.org/10.1038/ki.1993.36 pmid: 8433563
14 Kato S, Yuzawa  Y, Tsuboi N ,  Maruyama S ,  Morita Y ,  Matsuguchi T ,  Matsuo S . Endotoxin-induced chemokine expression in murine peritoneal mesothelial cells: the role of toll-like receptor 4. J Am Soc Nephrol 2004; 15(5): 1289–1299
pmid: 15100369
15 López-Cabrera M. Mesenchymal conversion of mesothelial cells is a key event in the pathophysiology of the peritoneum during peritoneal dialysis. Adv Med 2014; 2014: 473134 doi: 10.1155/2014/473134
16 Di Paolo N, Sacchi  G. Atlas of peritoneal histology. Perit Dial Int 2000; 20(Suppl 3): S5–S96
pmid: 10877488
17 Boulanger E, Wautier  MP, Wautier JL ,  Boval B ,  Panis Y ,  Wernert N ,  Danze PM ,  Dequiedt P . AGEs bind to mesothelial cells via RAGE and stimulate VCAM-1 expression. Kidney Int 2002; 61(1): 148–156
https://doi.org/10.1046/j.1523-1755.2002.00115.x pmid: 11786095
18 De Vriese AS. The John F. Maher Recipient Lecture 2004: rage in the peritoneum. Perit Dial Int 2005; 25(1): 8–11
pmid: 15770917
19 Jiang N, Zhang  Z, Fang W ,  Qian J, Mou  S, Ni Z . High peritoneal glucose exposure is associated with increased incidence of relapsing and recurrent bacterial peritonitis in patients undergoing peritoneal dialysis. Blood Purif 2015; 40(1): 72–78
https://doi.org/10.1159/000381663 pmid: 26138314
20 Yang X, Lin  A, Jiang N ,  Yan H, Ni  Z, Qian J ,  Fang W. Interleukin-6 trans-signalling induces vascular endothelial growth factor synthesis partly via Janus kinases-STAT3 pathway in human mesothelial cells. Nephrology (Carlton) 2017; 22(2): 150–158
https://doi.org/10.1111/nep.12746 pmid: 26869278
21 Yang X, Zhang  H, Hang Y ,  Yan H, Lin  A, Huang J ,  Ni Z, Qian  J, Fang W . Intraperitoneal interleukin-6 levels predict peritoneal solute transport rate: a prospective cohort study. Am J Nephrol 2014; 39(6): 459–465
https://doi.org/10.1159/000362622 pmid: 24854010
22 Ding L, Shao  X, Cao L ,  Fang W, Yan  H, Huang J ,  Gu A, Yu  Z, Qi C ,  Chang X ,  Ni Z. Possible role of IL-6 and TIE2 gene polymorphisms in predicting the initial high transport status in patients with peritoneal dialysis: an observational study. BMJ Open 2016; 6(10): e012967
https://doi.org/10.1136/bmjopen-2016-012967 pmid: 27798027
23 Feurino LW, Zhang  Y, Bharadwaj U ,  Zhang R ,  Li F, Fisher  WE, Brunicardi FC ,  Chen C, Yao  Q, Min L . IL-6 stimulates Th2 type cytokine secretion and upregulates VEGF and NRP-1 expression in pancreatic cancer cells. Cancer Biol Ther 2007; 6(7): 1096–1100
https://doi.org/10.4161/cbt.6.7.4328 pmid: 17568185
24 Park JH, Kim  YG, Shaw M ,  Kanneganti TD ,  Fujimoto Y ,  Fukase K ,  Inohara N ,  Núñez G . Nod1/RICK and TLR signaling regulate chemokine and antimicrobial innate immune responses in mesothelial cells. J Immunol 2007; 179(1): 514–521
https://doi.org/10.4049/jimmunol.179.1.514 pmid: 17579072
25 Lai KN, Tang  SC, Leung JC . Mediators of inflammation and fibrosis. Perit Dial Int 2007; 27(Suppl 2): S65–S71
pmid: 17556333
26 Colmont CS, Raby  AC, Dioszeghy V ,  Lebouder E ,  Foster TL ,  Jones SA ,  Labéta MO ,  Fielding CA ,  Topley N . Human peritoneal mesothelial cells respond to bacterial ligands through a specific subset of Toll-like receptors. Nephrol Dial Transplant 2011; 26(12): 4079–4090
https://doi.org/10.1093/ndt/gfr217 pmid: 21633096
27 Leifer CA, Medvedev  AE. Molecular mechanisms of regulation of Toll-like receptor signaling. J Leukoc Biol 2016; 100(5): 927–941
https://doi.org/10.1189/jlb.2MR0316-117RR pmid: 27343013
28 Achek A, Yesudhas  D, Choi S . Toll-like receptors: promising therapeutic targets for inflammatory diseases. Arch Pharm Res 2016; 39(8): 1032–1049
https://doi.org/10.1007/s12272-016-0806-9 pmid: 27515048
29 Strippoli R, Benedicto  I, Pérez Lozano  ML, Cerezo A ,  López-Cabrera M ,  del Pozo MA . Epithelial-to-mesenchymal transition of peritoneal mesothelial cells is regulated by an ERK/NF-κB/Snail1 pathway. Dis Model Mech 2008; 1(4-5): 264–274 doi:10.1242/dmm.001321
pmid: 19093035
30 Cuenda A, Rousseau  Sp38 MAP-kinases pathway regulation, function and role in human diseases. Biochim Biophys Acta 2007; 1773:1358–1375
https://doi.org/DOI: 10.1016/j.bbamcr.2007.03.010
31 Strippoli R, Benedicto  I, Foronda M ,  Perez-Lozano ML ,  Sánchez-Perales S ,  López-Cabrera M ,  Del Pozo MÁ . p38 maintains E-cadherin expression by modulating TAK1-NF-κB during epithelial-to-mesenchymal transition. J Cell Sci 2010; 123(24): 4321–4331
https://doi.org/10.1242/jcs.071647 pmid: 21098640
32 Zhou Q, Yang  M, Lan H ,  Yu X. miR-30a negatively regulates TGF- b1-induced epithelial-mesenchymal transition and peritoneal fibrosis by targeting Snai1. Am J Pathol 2013; 183(3): 808–819
https://doi.org/10.1016/j.ajpath.2013.05.019 pmid: 23831330
33 Zhang K, Zhang  H, Zhou X ,  Tang WB ,  Xiao L, Liu  YH, Liu H ,  Peng YM ,  Sun L, Liu  FY. miRNA 589 regulates epithelial mesenchymal transition in human peritoneal mesothelial cells. J Biomed Biotechnol 2012; 2012: 673096
https://doi.org/ 10.1155/2012/673096
34 Liu Q, Mao  H, Nie J ,  Chen W, Yang  Q, Dong X ,  Yu X. Transforming growth factor β1 induces epithelial-mesenchymal transition by activating the JNK-Smad3 pathway in rat peritoneal mesothelial cells. Perit Dial Int 2008; 28(Suppl 3): S88–S95
pmid: 18552272
35 Shen J, Wang  L, Jiang N ,  Mou S, Zhang  M, Gu L ,  Shao X, Wang  Q, Qi C ,  Li S, Wang  W, Che X ,  Ni Z. NLRP3 inflammasome mediates contrast media-induced acute kidney injury by regulating cell apoptosis. Sci Rep 2016; 6(1): 34682
https://doi.org/10.1038/srep34682 pmid: 27721494
36 Hautem N, Morelle  J, Sow A ,  Corbet C ,  Feron O ,  Goffin E ,  Huaux F ,  Devuyst O. The NLRP3 inflammasome has a critical role in peritoneal dialysis-related peritonitis. J Am Soc Nephrol 2017; 28(7):2038–2052.  PMID: 28193826
https://doi.org/ 10.1681/ASN.2016070729
37 Yáñez-Mó M ,  Lara-Pezzi E ,  Selgas R ,  Ramírez-Huesca M ,  Domínguez-Jiménez C, Jiménez-Heffernan  JA, Aguilera A ,  Sánchez-Tomero JA ,  Bajo MA ,  Alvarez V ,  Castro MA ,  del Peso G ,  Cirujeda A ,  Gamallo C ,  Sánchez-Madrid F ,  López-Cabrera M . Peritoneal dialysis and epithelial-to-mesenchymal transition of mesothelial cells. N Engl J Med 2003; 348(5): 403–413
https://doi.org/10.1056/NEJMoa020809 pmid: 12556543
38 Strippoli R, Moreno-Vicente  R, Battistelli C ,  Cicchini C ,  Noce V, Amicone  L, Marchetti A ,  Del Pozo MA ,  Tripodi M . Molecular mechanisms underlying peritoneal EMT and fibrosis. Stem Cells Int 2016; 2016: 3543678
https://doi.org/ 10.1155/2016/3543678
39 Wu J, Li  X, Zhu G ,  Zhang Y ,  He M, Zhang  J. The role of Resveratrol-induced mitophagy/autophagy in peritoneal mesothelial cells inflammatory injury via NLRP3 inflammasome activation triggered by mitochondrial ROS. Exp Cell Res 2016; 341(1): 42–53
https://doi.org/10.1016/j.yexcr.2016.01.014 pmid: 26825654
40 Yuan J, Fang  W, Ni Z ,  Dai H, Lin  A, Cao L ,  Qian J. Peritoneal morphologic changes in a peritoneal dialysis rat model correlate with angiopoietin/Tie-2. Pediatr Nephrol 2009; 24(1): 163–170
https://doi.org/10.1007/s00467-008-0944-5 pmid: 18751736
41 Zweers MM, Struijk  DG, Smit W ,  Krediet RT . Vascular endothelial growth factor in peritoneal dialysis: a longitudinal follow-up. J Lab Clin Med 2001; 137(2): 125–132
https://doi.org/10.1067/mlc.2001.112235 pmid: 11174469
42 Mortier S, Faict  D, Lameire NH ,  De Vriese AS . Benefits of switching from a conventional to a low-GDP bicarbonate/lactate-buffered dialysis solution in a rat model. Kidney Int 2005; 67(4): 1559–1565
https://doi.org/10.1111/j.1523-1755.2005.00237.x pmid: 15780112
43 Stavenuiter AW, Schilte  MN, Ter Wee PM ,  Beelen RH . Angiogenesis in peritoneal dialysis. Kidney Blood Press Res 2011; 34(4): 245–252
https://doi.org/10.1159/000326953 pmid: 21691127
44 Niu J, Azfer  A, Zhelyabovska O ,  Fatma S ,  Kolattukudy PE . Monocyte chemotactic protein (MCP)-1 promotes angiogenesis via a novel transcription factor, MCP-1-induced protein (MCPIP). J Biol Chem 2008; 283(21): 14542–14551
https://doi.org/10.1074/jbc.M802139200 pmid: 18364357
45 Margetts PJ, Kolb  M, Yu L ,  Hoff CM ,  Holmes CJ ,  Anthony DC ,  Gauldie J . Inflammatory cytokines, angiogenesis, and fibrosis in the rat peritoneum. Am J Pathol 2002; 160(6): 2285–2294
https://doi.org/10.1016/S0002-9440(10)61176-5 pmid: 12057931
46 Rosell A, Arai  K, Lok J ,  He T, Guo  S, Navarro M ,  Montaner J ,  Katusic ZS ,  Lo EH. Interleukin-1β augments angiogenic responses of murine endothelial progenitor cells in vitro. J Cereb Blood Flow Metab 2009; 29(5): 933–943 PMID:19240740 
https://doi.org/10.1038/jcbfm.2009.17
47 Catar R, Witowski  J, Zhu N ,  Lücht C ,  Derrac Soria A ,  Uceda Fernandez J ,  Chen L, Jones  SA, Fielding CA ,  Rudolf A ,  Topley N ,  Dragun D ,  Jörres A . IL-6 trans-signaling links inflammation with angiogenesis in the peritoneal membrane. J Am Soc Nephrol 2017; 28(4): 1188–1199
https://doi.org/10.1681/ASN.2015101169 pmid: 27837150
48 Fan Y, Ye  J, Shen F ,  Zhu Y, Yeghiazarians  Y, Zhu W ,  Chen Y, Lawton  MT, Young WL ,  Yang GY . Interleukin-6 stimulates circulating blood-derived endothelial progenitor cell angiogenesis in vitro. J Cereb Blood Flow Metab 2008; 28(1): 90–98
https://doi.org/10.1038/sj.jcbfm.9600509 pmid: 17519976
49 Li A, Dubey  S, Varney ML ,  Dave BJ ,  Singh RK . IL-8 directly enhanced endothelial cell survival, proliferation, and matrix metalloproteinases production and regulated angiogenesis. J Immunol 2003; 170(6): 3369–3376
https://doi.org/10.4049/jimmunol.170.6.3369 pmid: 12626597
50 Leibovich SJ, Polverini  PJ, Shepard HM ,  Wiseman DM ,  Shively V ,  Nuseir N . Macrophage-induced angiogenesis is mediated by tumour necrosis factor-α. Nature 1987; 329(6140): 630–632
https://doi.org/10.1038/329630a0 pmid: 2443857
51 De Vriese AS, Tilton  RG, Stephan CC ,  Lameire NH . Vascular endothelial growth factor is essential for hyperglycemia-induced structural and functional alterations of the peritoneal membrane. J Am Soc Nephrol 2001; 12(8): 1734–1741
pmid: 11461947
52 Neufeld G, Cohen  T, Gengrinovitch S ,  Poltorak Z . Vascular endothelial growth factor (VEGF) and its receptors. FASEB J 1999; 13(1): 9–22
pmid: 9872925
53 Roskoski R Jr . Vascular endothelial growth factor (VEGF) and VEGF receptor inhibitors in the treatment of renal cell carcinomas. Pharmacol Res 2017; 120: 116–132
https://doi.org/10.1016/j.phrs.2017.03.010 pmid: 28330784
54 González-Mateo GT ,  Aguirre AR ,  Loureiro J ,  Abensur H ,  Sandoval P ,  Sánchez-Tomero JA ,  delPeso G ,  Jiménez-Heffernan JA ,  Ruiz-Carpio V ,  Selgas R ,  López-Cabrera M ,  Aguilera A ,  Liappas G . Rapamycin protects from type I peritoneal membrane failure inhibiting the angiogenesis, lymphangiogenesis, and Endo-MT. Biomed Res Int 2015; 2015: 989560 doi: 10.1155/2015/989560
55 Evans I. An overview of VEGF-mediated signal transduction. Methods Mol Biol 2015; 1332: 91–120
https://doi.org/10.1007/978-1-4939-2917-7_7 pmid: 26285748
56 Aroeira LS, Lara-Pezzi  E, Loureiro J ,  Aguilera A ,  Ramírez-Huesca M ,  González-Mateo G ,  Pérez-Lozano ML ,  Albar-Vizcaíno P ,  Bajo MA ,  del Peso G ,  Sánchez-Tomero JA ,  Jiménez-Heffernan JA ,  Selgas R ,  López-Cabrera M . Cyclooxygenase-2 mediates dialysate-induced alterations of the peritoneal membrane. J Am Soc Nephrol 2009; 20(3): 582–592
https://doi.org/10.1681/ASN.2008020211 pmid: 19158357
57 Maisonpierre PC, Suri  C, Jones PF ,  Bartunkova S ,  Wiegand SJ ,  Radziejewski C ,  Compton D ,  McClain J ,  Aldrich TH ,  Papadopoulos N ,  Daly TJ ,  Davis S ,  Sato TN ,  Yancopoulos GD . Angiopoietin-2, a natural antagonist for Tie2 that disrupts in vivo angiogenesis. Science 1997; 277(5322): 55–60
https://doi.org/10.1126/science.277.5322.55 pmid: 9204896
58 Kim M, Allen  B, Korhonen EA ,  Nitschké M ,  Yang HW ,  Baluk P ,  Saharinen P ,  Alitalo K ,  Daly C, Thurston  G, McDonald DM . Opposing actions of angiopoietin-2 on Tie2 signaling and FOXO1 activation. J Clin Invest 2016; 126(9): 3511–3525
https://doi.org/10.1172/JCI84871 pmid: 27548529
59 Mueller SB, Kontos  CD. Tie1: an orphan receptor provides context for angiopoietin-2/Tie2 signaling. J Clin Invest 2016; 126(9): 3188–3191
https://doi.org/10.1172/JCI89963 pmid: 27548526
60 Korhonen EA, Lampinen  A, Giri H ,  Anisimov A ,  Kim M, Allen  B, Fang S ,  D’Amico G ,  Sipilä TJ ,  Lohela M ,  Strandin T ,  Vaheri A ,  Ylä-Herttuala S ,  Koh GY, McDonald  DM, Alitalo K ,  Saharinen P . Tie1 controls angiopoietin function in vascular remodeling and inflammation. J Clin Invest 2016; 126(9): 3495–3510
https://doi.org/10.1172/JCI84923 pmid: 27548530
61 Fagiani E, Christofori  G. Angiopoietins in angiogenesis. Cancer Lett 2013; 328(1): 18–26
https://doi.org/10.1016/j.canlet.2012.08.018 pmid: 22922303
62 Reiss Y. Angiopoietins. Recent Results Cancer Res 2010; 180: 3–13
https://doi.org/10.1007/978-3-540-78281-0_2 pmid: 20033375
63 Fukuhara S, Sako  K, Minami T ,  Noda K, Kim  HZ, Kodama T ,  Shibuya M ,  Takakura N ,  Koh GY, Mochizuki  N. Differential function of Tie2 at cell-cell contacts and cell-substratum contacts regulated by angiopoietin-1. Nat Cell Biol 2008; 10(5): 513–526
https://doi.org/10.1038/ncb1714 pmid: 18425120
64 Yuan J, Fang  W, Lin A ,  Ni Z, Qian  J. Angiopoietin-2/Tie2 signaling involved in TNF- a induced peritoneal angiogenesis. Int J Artif Organs 2012; 35(9): 655–662
pmid: 23065888
65 Zareie M, Hekking  LH, Welten AG ,  Driesprong BA ,  Schadee-Eestermans IL ,  Faict D ,  Leyssens A ,  Schalkwijk CG ,  Beelen RH ,  ter Wee PM ,  van den Born J . Contribution of lactate buffer, glucose and glucose degradation products to peritoneal injury in vivo. Nephrol Dial Transplant 2003; 18(12): 2629–2637
https://doi.org/10.1093/ndt/gfg356 pmid: 14605288
66 Xiao J, Guo  J, Liu XX ,  Zhang XX ,  Li ZZ, Zhao  ZZ, Liu ZS . Soluble Tie2 fusion protein decreases peritoneal angiogenesis in uremic rats. Mol Med Rep 2013; 8(1): 267–271
pmid: 23685484
67 David S, John  SG, Jefferies HJ ,  Sigrist MK ,  Kümpers P ,  Kielstein JT ,  Haller H ,  McIntyre CW . Angiopoietin-2 levels predict mortality in CKD patients. Nephrol Dial Transplant 2012; 27(5): 1867–1872
https://doi.org/10.1093/ndt/gfr551 pmid: 21976741
68 Raby AC, Colmont  CS, Kift-Morgan A ,  Köhl J ,  Eberl M ,  Fraser D ,  Topley N ,  Labéta MO . Toll-like receptors 2 and 4 are potential therapeutic targets in peritoneal dialysis-associated fibrosis. J Am Soc Nephrol 2017; 28(2): 461–478
https://doi.org/10.1681/ASN.2015080923 pmid: 27432741
69 Achek A, Yesudhas  D, Choi S . Toll-like receptors: promising therapeutic targets for inflammatory diseases. Arch Pharm Res 2016; 39(8): 1032–1049
https://doi.org/10.1007/s12272-016-0806-9 pmid: 27515048
70 Kushiyama T, Oda  T, Yamada M ,  Higashi K ,  Yamamoto K ,  Oshima N ,  Sakurai Y ,  Miura S ,  Kumagai H . Effects of liposome-encapsulated clodronate on chlorhexidine gluconate-induced peritoneal fibrosis in rats. Nephrol Dial Transplant 2011; 26(10): 3143–3154
https://doi.org/10.1093/ndt/gfr068 pmid: 21362737
71 Bajo MA, Del Peso  G, Teitelbaum I . Peritoneal membrane preservation. Semin Nephrol 2017; 37(1): 77–92
https://doi.org/10.1016/j.semnephrol.2016.10.009 pmid: 28153197
72 Qayyum A, Oei  EL, Paudel K ,  Fan SL. Increasing the use of biocompatible, glucose-free peritoneal dialysis solutions. World J Nephrol 2015; 4(1): 92–97
https://doi.org/10.5527/wjn.v4.i1.92 pmid: 25664250
73 Pecoits-Filho R, Araújo  MR, Lindholm B ,  Stenvinkel P ,  Abensur H ,  Romão JE Jr ,  Marcondes M ,  De Oliveira AH ,  Noronha IL . Plasma and dialysate IL-6 and VEGF concentrations are associated with high peritoneal solute transport rate. Nephrol Dial Transplant 2002; 17(8): 1480–1486
https://doi.org/10.1093/ndt/17.8.1480 pmid: 12147798
74 Ferrantelli E, Liappas  G, Vila Cuenca M ,  Keuning ED ,  Foster TL ,  Vervloet MG ,  Lopéz-Cabrera M ,  Beelen RH . The dipeptide alanyl-glutamine ameliorates peritoneal fibrosis and attenuates IL-17 dependent pathways during peritoneal dialysis. Kidney Int 2016; 89(3): 625–635
https://doi.org/10.1016/j.kint.2015.12.005 pmid: 26880457
75 Bozkurt D, Sipahi  S, Cetin P ,  Hur E, Ozdemir  O, Ertilav M ,  Sen S, Duman  S. Does immunosuppressive treatment ameliorate morphology changes in encapsulating peritoneal sclerosis? Perit Dial Int 2009; 29(Suppl 2): S206–S210
pmid: 19270219
76 Hur E, Bozkurt  D, Timur O ,  Bicak S ,  Sarsik B ,  Akcicek F ,  Duman S . The effects of mycophenolate mofetil on encapsulated peritoneal sclerosis model in rats. Clin Nephrol 2012; 77(1): 1–7
https://doi.org/10.5414/CN107140 pmid: 22185962
77 Takahashi S, Taniguchi  Y, Nakashima A ,  Arakawa T ,  Kawai T ,  Doi S, Ito  T, Masaki T ,  Kohno N ,  Yorioka N . Mizoribine suppresses the progression of experimental peritoneal fibrosis in a rat model. Nephron, Exp Nephrol 2009; 112(2): e59–e69
https://doi.org/10.1159/000213896 pmid: 19390220
78 Tapiawala SN, Bargman  JM, Oreopoulos DG ,  Simons M . Prolonged use of the tyrosine kinase inhibitor in a peritoneal dialysis patient with metastatic renal cell carcinoma: possible beneficial effects on peritoneal membrane and peritonitis rates. Int Urol Nephrol 2009; 41(2): 431–434
https://doi.org/10.1007/s11255-009-9545-x pmid: 19255867
79 Bozkurt D, Sarsik  B, Hur E ,  Ertilav M ,  Karaca B ,  Timur O ,  Bicak S ,  Akcicek F ,  Duman S . A novel angiogenesis inhibitor, sunitinib malate, in encapsulating peritoneal sclerosis. J Nephrol 2011; 24(3): 359–365
https://doi.org/10.5301/JN.2011.6257 pmid: 21240876
80 Loureiro J, Schilte  M, Aguilera A ,  Albar-Vizcaíno P ,  Ramírez-Huesca M ,  Pérez-Lozano ML ,  González-Mateo G ,  Aroeira LS ,  Selgas R ,  Mendoza L ,  Ortiz A ,  Ruíz-Ortega M ,  van den Born J ,  Beelen RH ,  López-Cabrera M . BMP-7 blocks mesenchymal conversion of mesothelial cells and prevents peritoneal damage induced by dialysis fluid exposure. Nephrol Dial Transplant 2010; 25(4): 1098–1108
https://doi.org/10.1093/ndt/gfp618 pmid: 20067910
81 Peng W, Dou  X, Hao W ,  Zhou Q, Tang  R, Nie J ,  Lan HY, Yu  X. Smad7 gene transfer attenuates angiogenesis in peritoneal dialysis rats. Nephrology (Carlton) 2013; 18(2): 138–147
https://doi.org/10.1111/nep.12017 pmid: 23217002
82 Fabbrini P, Schilte  MN, Zareie M ,  ter Wee PM ,  Keuning ED ,  Beelen RH ,  van den Born J . Celecoxib treatment reduces peritoneal fibrosis and angiogenesis and prevents ultrafiltration failure in experimental peritoneal dialysis. Nephrol Dial Transplant 2009; 24(12): 3669–3676
https://doi.org/10.1093/ndt/gfp384 pmid: 19666665
83 Yoshio Y, Miyazaki  M, Abe K ,  Nishino T ,  Furusu A ,  Mizuta Y ,  Harada T ,  Ozono Y ,  Koji T, Kohno  S. TNP-470, an angiogenesis inhibitor, suppresses the progression of peritoneal fibrosis in mouse experimental model. Kidney Int 2004; 66(4): 1677–1685
https://doi.org/10.1111/j.1523-1755.2004.00935.x pmid: 15458466
84 Hekking LH, Zareie  M, Driesprong BA ,  Faict D ,  Welten AG ,  de Greeuw I ,  Schadee-Eestermans IL ,  Havenith CE ,  van den Born J ,  ter Wee PM ,  Beelen RH . Better preservation of peritoneal morphologic features and defense in rats after long-term exposure to a bicarbonate/lactate-buffered solution. J Am Soc Nephrol 2001; 12(12): 2775–2786
pmid: 11729248
85 Johnson DW, Brown  FG, Clarke M ,  Boudville N ,  Elias TJ ,  Foo MW, Jones  B, Kulkarni H ,  Langham R ,  Ranganathan D ,  Schollum J ,  Suranyi MG ,  Tan SH, Voss  D; balANZ Trial Investigators. The effect of low glucose degradation product, neutral pH versus standard peritoneal dialysis solutions on peritoneal membrane function: the balANZ trial. Nephrol Dial Transplant 2012; 27(12): 4445–4453
https://doi.org/10.1093/ndt/gfs314 pmid: 22859794
86 Seo EY, An  SH, Cho JH ,  Suh HS, Park  SH, Gwak H ,  Kim YL, Ha  H. Effect of biocompatible peritoneal dialysis solution on residual renal function: a systematic review of randomized controlled trials. Perit Dial Int 2014; 34(7): 724–731
https://doi.org/10.3747/pdi.2012.00331 pmid: 25185015
87 Lin A, Qian  J, Li X ,  Yu X, Liu  W, Sun Y ,  Chen N, Mei  C; Icodextrin National Multi-center Cooperation Group.Randomized controlled trial of icodextrin versus glucose containing peritoneal dialysis fluid. Clin J Am Soc Nephrol 2009; 4(11): 1799–1804
https://doi.org/10.2215/CJN.02950509 pmid: 19808224
88 Takatori Y, Akagi  S, Sugiyama H ,  Inoue J ,  Kojo S, Morinaga  H, Nakao K ,  Wada J, Makino  H. Icodextrin increases technique survival rate in peritoneal dialysis patients with diabetic nephropathy by improving body fluid management: a randomized controlled trial. Clin J Am Soc Nephrol 2011; 6(6): 1337–1344
https://doi.org/10.2215/CJN.10041110 pmid: 21493740
89 le Poole CY, Welten  AG, Weijmer MC ,  Valentijn RM ,  van Ittersum FJ ,  ter Wee PM . Initiating CAPD with a regimen low in glucose and glucose degradation products, with icodextrin and amino acids (NEPP) is safe and efficacious. Perit Dial Int 2005; 25(Suppl 3): S64–S68
pmid: 16048260
90 del Peso G, Jiménez-Heffernan  JA, Selgas R ,  Remón C ,  Ossorio M ,  Fernández-Perpén A, Sánchez-Tomero JA, Cirugeda A ,  de Sousa E ,  Sandoval P ,  Díaz R ,  López-Cabrera M ,  Bajo MA . Biocompatible dialysis solutions preserve peritoneal mesothelial cell and vessel wall integrity. a case-control study on human biopsies. Perit Dial Int 2016; 36(2): 129–134
https://doi.org/10.3747/pdi.2014.00038 pmid: 26475848
91 Washida N, Wakino  S, Tonozuka Y ,  Homma K ,  Tokuyama H ,  Hara Y, Hasegawa  K, Minakuchi H ,  Fujimura K ,  Hosoya K ,  Hayashi K ,  Itoh H. Rho-kinase inhibition ameliorates peritoneal fibrosis and angiogenesis in a rat model of peritoneal sclerosis. Nephrol Dial Transplant 2011; 26(9): 2770–2779
https://doi.org/10.1093/ndt/gfr012 pmid: 21378147
92 Peng W, Zhou  Q, Ao X ,  Tang R, Xiao  Z. Inhibition of Rho-kinase alleviates peritoneal fibrosis and angiogenesis in a rat model of peritoneal dialysis. Ren Fail 2013; 35(7): 958–966
https://doi.org/10.3109/0886022X.2013.808565 pmid: 23859538
93 Tanabe K, Maeshima  Y, Ichinose K ,  Kitayama H ,  Takazawa Y ,  Hirokoshi K ,  Kinomura M ,  Sugiyama H ,  Makino H . Endostatin peptide, an inhibitor of angiogenesis, prevents the progression of peritoneal sclerosis in a mouse experimental model. Kidney Int 2007; 71(3): 227–238
https://doi.org/10.1038/sj.ki.5002040 pmid: 17191085
94 Busnadiego O, Loureiro-Álvarez  J, Sandoval P ,  Lagares D ,  Dotor J ,  Pérez-Lozano ML ,  López-Armada MJ ,  Lamas S ,  López-Cabrera M ,  Rodríguez-Pascual F . A pathogenetic role for endothelin-1 in peritoneal dialysis-associated fibrosis. J Am Soc Nephrol 2015; 26(1): 173–182
https://doi.org/10.1681/ASN.2013070799 pmid: 25012164
95 Pletinck A, Van Landschoot  M, Steppan S ,  Laukens D ,  Passlick-Deetjen J ,  Vanholder R ,  Van Biesen W . Oral supplementation with sulodexide inhibits neo-angiogenesis in a rat model of peritoneal perfusion. Nephrol Dial Transplant 2012; 27(2): 548–556
https://doi.org/10.1093/ndt/gfr370 pmid: 21750165
[1] Xiaojing Jiao, Dong Zhang, Quan Hong, Lei Yan, Qiuxia Han, Fengmin Shao, Guangyan Cai, Xiangmei Chen, Hanyu Zhu. Netrin-1 works with UNC5B to regulate angiogenesis in diabetic kidney disease[J]. Front. Med., 2020, 14(3): 293-304.
[2] Amy Lee, Fa-Chyi Lee. Medical oncology management of advanced hepatocellular carcinoma 2019: a reality check[J]. Front. Med., 2020, 14(3): 273-283.
[3] Jian Liu, Pingyan Shen, Xiaobo Ma, Xialian Yu, Liyan Ni, Xu Hao, Weiming Wang, Nan Chen. White blood cell count and the incidence of hyperuricemia: insights from a community-based study[J]. Front. Med., 2019, 13(6): 741-746.
[4] Nikolay V. Tsygan, Alexandr P. Trashkov, Igor V. Litvinenko, Viktoriya A. Yakovleva, Alexandr V. Ryabtsev, Andrey G. Vasiliev, Leonid P. Churilov. Autoimmunity in acute ischemic stroke and the role of blood--brain barrier: the dark side or the light one?[J]. Front. Med., 2019, 13(4): 420-426.
[5] Ning Jiang, Yao Li, Ting Shu, Jing Wang. Cytokines and inflammation in adipogenesis: an updated review[J]. Front. Med., 2019, 13(3): 314-329.
[6] Marijke A. de Vries,Arash Alipour,Erwin Birnie,Andrew Westzaan,Selvetta van Santen,Ellen van der Zwan,Anho H. Liem,Noëlle van der Meulen,Manuel Castro Cabezas. Coronary leukocyte activation in relation to progression of coronary artery disease[J]. Front. Med., 2016, 10(1): 85-90.
[7] Jianping Ye. Beneficial metabolic activities of inflammatory cytokine interleukin 15 in obesity and type 2 diabetes[J]. Front. Med., 2015, 9(2): 139-145.
[8] Zhicheng Zhang,Jun Yang,Mingchao Li,Wei Cai,Qingquan Liu,Tao Wang,Xiaolin Guo,Shaogang Wang,Jihong Liu,Zhangqun Ye. Paratesticular fibrous pseudotumor: a report of five cases and literature review[J]. Front. Med., 2014, 8(4): 484-488.
[9] Khurram Siddique, Shirin Mirza, Gandra Harinath. Appendiceal inflammation affects the length of stay following appendicectomy amongst children: a myth or reality?[J]. Front Med, 2013, 7(2): 264-269.
[10] Jianping Ye. Mechanisms of insulin resistance in obesity[J]. Front Med, 2013, 7(1): 14-24.
[11] Tao Li, Nanfu Luo, Lei Du, Jin Liu, Lina Gong, Jing Zhou. Early and marked up-regulation of TNF-α in acute respiratory distress syndrome after cardiopulmonary bypass[J]. Front Med, 2012, 6(3): 296-301.
[12] Bingxue Shang, Zhifei Cao, Quansheng Zhou. Progress in tumor vascular normalization for anticancer therapy: challenges and perspectives[J]. Front Med, 2012, 6(1): 67-78.
[13] Wei Zhuo, Yang Chen, Xiaomin Song, Yongzhang Luo. Endostatin specifically targets both tumor blood vessels and lymphatic vessels[J]. Front Med, 2011, 5(4): 336-340.
[14] Haiyan LU, Yongting WANG, Falei YUAN, Jianrong LIU, Lili ZENG, Guo-Yuan YANG. Overexpression of netrin-1 improves neurological outcomes in mice following transient middle cerebral artery occlusion[J]. Front Med, 2011, 5(1): 86-93.
[15] Min-Hao WU, Ping ZHANG, Xi HUANG, . Toll-like receptors in innate immunity and infectious diseases[J]. Front. Med., 2010, 4(4): 385-393.
Viewed
Full text


Abstract

Cited

  Shared   
  Discussed