Please wait a minute...
Frontiers of Chemical Science and Engineering

ISSN 2095-0179

ISSN 2095-0187(Online)

CN 11-5981/TQ

Postal Subscription Code 80-969

2018 Impact Factor: 2.809

Front. Chem. Sci. Eng.    2016, Vol. 10 Issue (1) : 90-98    https://doi.org/10.1007/s11705-015-1550-2
REVIEW ARTICLE
Microfluidics for cell-cell interactions: A review
Rui Li,Xuefei Lv,Xingjian Zhang,Omer Saeed,Yulin Deng()
School of Life Science, Beijing Institute of Technology, Beijing 100081, China
 Download: PDF(502 KB)   HTML
 Export: BibTeX | EndNote | Reference Manager | ProCite | RefWorks
Abstract

Microfluidic chip has been applied in various biological fields owing to its low-consumption of reagents, high throughput, fluidic controllability and integrity. The well-designed microscale intermediary is also ideal for the study of cell biology. Particularly, microfluidic chip is helpful for better understanding cell-cell interactions. A general survey of recent publications would help to generalize the designs of the co-culture chips with different features. With ingenious and combinational utilization, the chips facilitate the implementation of some special co-culture models that are highly concerned in a different spatial and temporal way.

Keywords microfluidic chip      co-culture      cell-cell interactions      review     
Corresponding Author(s): Yulin Deng   
Online First Date: 29 December 2015    Issue Date: 29 February 2016
 Cite this article:   
Omer Saeed,Rui Li,Xuefei Lv, et al. Microfluidics for cell-cell interactions: A review[J]. Front. Chem. Sci. Eng., 2016, 10(1): 90-98.
 URL:  
https://academic.hep.com.cn/fcse/EN/10.1007/s11705-015-1550-2
https://academic.hep.com.cn/fcse/EN/Y2016/V10/I1/90
Fig.1  Typical progress of seeding and culturing cells in 3D structure
Fig.2  Pneumatic microvalve operations for cell co-culture
Fig.3  Microchannel design for real time observation of cell-cell interaction
Fig.4  Membrane insertion between two chambers for separating and culturing cells
Co-culture modes Typical research area Typical microfluidics Cell types
Vascular system AngiogenesisHemodynamicsCancer effectWound healing 3D structureMembrane insertMicrogaps Epithelial cellsFibroblasts, Pericytes Muscle cells
Cancer research EMTInflammatory response Microvalve applicationMicrogaps (channels) Cancer cell linesFibroblastsEpithelial cellsImmune cells
Neurosciences NeuroprotectionNeurological disorders Microchannels NeuronAstrocyte
Eukaryocyte and Bacteria Intestinal microenvironmentBacterial cancer targeting Membrane insertMicrogaps BacterialEpithelial cells
Tissue engineering Organs on chip 3D structure Tissue related Cells
(liver, lung, kidney et al.) Membrane insert
Tab.1  Common co-culture modes in microfluidics and their features
1 Whitesides  G M. The origins and the future of microfluidics. Nature, 2006, 442(7101): 368–373
https://doi.org/10.1038/nature05058
2 Haeberle  S, Zengerle  R. Microfluidic platforms for lab-on-a-chip applications. Lab on a Chip, 2007, 7(9): 1094–1110
https://doi.org/10.1039/b706364b
3 Han  K N, Li  C A, Seong  G H. Microfluidic chips for immunoassays. Annual Review of Analytical Chemistry (Palo Alto, Calif.), 2013, 6(1): 119–141
https://doi.org/10.1146/annurev-anchem-062012-092616
4 Nan  L, Jiang  Z, Wei  X. Emerging microfluidic devices for cell lysis: A review. Lab on a Chip, 2014, 14(6): 1060–1073
https://doi.org/10.1039/c3lc51133b
5 Smejkal  P, Bottenus  D, Breadmore  M C, Guijt  R M, Ivory  C F, Foret  F, Macka  M. Microfluidic isotachophoresis: A review. Electrophoresis, 2013, 34(11): 1493–1509
https://doi.org/10.1002/elps.201300021
6 Ma  S, Loufakis  D N, Cao  Z, Chang  Y, Achenie  L, Lu  C. Diffusion-based microfluidic PCR for “one-pot” analysis of cells. Lab on a Chip, 2014, 14(16): 2905–2909
https://doi.org/10.1039/C4LC00498A
7 Sommer  G J, Hatch  A V, Singh  A K, Wang  Y C. Microfluidic device having an immobilized pH gradient and page gels for protein separation and analysis: US Patent 8728290,2014-5-20
8 Jebrail  M J, Renzi  R F, Sinha  A, Van De Vreugde  J, Gondhalekar  C, Ambriz  C, Meagher  R J, Branda  S S. A solvent replenishment solution for managing evaporation of biochemical reactions in air-matrix digital microfluidics devices. Lab on a Chip, 2015, 15(1): 151–158
https://doi.org/10.1039/C4LC00703D
9 Ren  K, Chen  Y, Wu  H. New materials for microfluidics in biology. Current Opinion in Biotechnology, 2014, 25: 78–85
https://doi.org/10.1016/j.copbio.2013.09.004
10 Sia  S K, Whitesides  G M. Microfluidic devices fabricated in poly(dimethylsiloxane) for biological studies. Electrophoresis, 2003, 24(21): 3563–3576
https://doi.org/10.1002/elps.200305584
11 Giulitti  S, Magrofuoco  E, Prevedello  L, Elvassore  N. Optimal periodic perfusion strategy for robust long-term microfluidic cell culture. Lab on a Chip, 2013, 13(22): 4430–4441
https://doi.org/10.1039/c3lc50643f
12 Zhang  Q, Liu  T, Qin  J. A microfluidic-based device for study of transendothelial invasion of tumor aggregates in realtime. Lab on a Chip, 2012, 12(16): 2837–2842
https://doi.org/10.1039/c2lc00030j
13 Ziolkowska  K, Jedrych  E, Kwapiszewski  R, Lopacinska  J, Skolimowski  M, Chudy  M. PDMS/glass microfluidic cell culture system for cytotoxicity tests and cells passage. Sensors and Actuators. B, Chemical, 2010, 145(1): 533–542
https://doi.org/10.1016/j.snb.2009.11.010
14 El-Ali  J, Sorger  P K, Jensen  K F. Cells on chips. Nature, 2006, 442(7101): 403–411
https://doi.org/10.1038/nature05063
15 Mehling  M, Tay  S. Microfluidic cell culture. Current Opinion in Biotechnology, 2014, 25: 95–102
https://doi.org/10.1016/j.copbio.2013.10.005
16 Xiong  B, Ren  K, Shu  Y, Chen  Y, Shen  B, Wu  H. Recent developments in microfluidics for cell studies. Advanced Materials, 2014, 26(31): 5525–5532
https://doi.org/10.1002/adma.201305348
17 Nge  P N, Rogers  C I, Woolley  A T. Advances in microfluidic materials, functions, integration, and applications. Chemical Reviews, 2013, 113(4): 2550–2583
https://doi.org/10.1021/cr300337x
18 Torisawa  Y S, Mosadegh  B, Luker  G D, Morell  M, O’Shea  K S, Takayama  S. Microfluidic hydrodynamic cellular patterning for systematic formation of co-culture spheroids. Integrative Biology, 2009, 1(11-12): 649–654
https://doi.org/10.1039/b915965g
19 Skafte-Pedersen  P, Hemmingsen  M, Sabourin  D, Blaga  F S, Bruus  H, Dufva  M. A self-contained, programmable microfluidic cell culture system with real-time microscopy access. Biomedical Microdevices, 2012, 14(2): 385–399
https://doi.org/10.1007/s10544-011-9615-6
20 Wang  D Y, Wu  S C, Lin  S P, Hsiao  S H, Chung  T W, Huang  Y Y. Evaluation of transdifferentiation from mesenchymal stem cells to neuron-like cells using microfluidic patterned co-culture system. Biomedical Microdevices, 2011, 13(3): 517–526
https://doi.org/10.1007/s10544-011-9520-z
21 Wei  C W, Cheng  J Y, Young  T H. Elucidating in vitro cell-cell interaction using a microfluidic coculture system. Biomedical Microdevices, 2006, 8(1): 65–71
https://doi.org/10.1007/s10544-006-6384-8
22 Kobel  S, Valero  A, Latt  J, Renaud  P, Lutolf  M. Optimization of microfluidic single cell trapping for long-term on-chip culture. Lab on a Chip, 2010, 10(7): 857–863
https://doi.org/10.1039/b918055a
23 Mazutis  L, Gilbert  J, Ung  W L, Weitz  D A, Griffiths  A D, Heyman  J A. Single-cell analysis and sorting using droplet-based microfluidics. Nature Protocols, 2013, 8(5): 870–891
https://doi.org/10.1038/nprot.2013.046
24 Yin  H, Marshall  D. Microfluidics for single cell analysis. Current Opinion in Biotechnology, 2012, 23(1): 110–119
https://doi.org/10.1016/j.copbio.2011.11.002
25 Kim  L, Toh  Y C, Voldman  J, Yu  H. A practical guide to microfluidic perfusion culture of adherent mammalian cells. Lab on a Chip, 2007, 7(6): 681–694
https://doi.org/10.1039/b704602b
26 Huang  C P, Lu  J, Seon  H, Lee  A P, Flanagan  L A, Kim  H Y, Putnam  A J, Jeon  N L. Engineering microscale cellular niches for three-dimensional multicellular co-cultures. Lab on a Chip, 2009, 9(12): 1740–1748
https://doi.org/10.1039/b818401a
27 Liu  T, Lin  B, Qin  J. Carcinoma-associated fibroblasts promoted tumor spheroid invasion on a microfluidic 3D co-culture device. Lab on a Chip, 2010, 10(13): 1671–1677
https://doi.org/10.1039/c000022a
28 Zhou  M, Ma  H, Lin  H, Qin  J. Induction of epithelial-to-mesenchymal transition in proximal tubular epithelial cells on microfluidic devices. Biomaterials, 2014, 35(5): 1390–1401
https://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2013.10.070
29 Unger  M A, Chou  H P, Thorsen  T, Scherer  A, Quake  S R. Monolithic microfabricated valves and pumps by multilayer soft lithography. Science, 2000, 288(5463): 113–116
https://doi.org/10.1126/science.288.5463.113
30 Liu  A, Liu  W, Wang  Y, Wang  J C, Tu  Q, Liu  R, Xu  J, Shen  S, Wang  J. Microvalve and liquid membrane double-controlled integrated microfluidics for observing the interaction of breast cancer cells. Microfluidics and Nanofluidics, 2012, 14(3-4): 515–526
https://doi.org/10.1007/s10404-012-1070-z
31 Majumdar  D, Gao  Y, Li  D, Webb  D J. Co-culture of neurons and glia in a novel microfluidic platform. Journal of Neuroscience Methods, 2011, 196(1): 38–44
https://doi.org/10.1016/j.jneumeth.2010.12.024
32 Gao  Y, Majumdar  D, Jovanovic  B, Shaifer  C, Lin  P C, Zijlstra  A, Webb  D J, Li  D. A versatile valve-enabled microfluidic cell co-culture platform and demonstration of its applications to neurobiology and cancer biology. Biomedical Microdevices, 2011, 13(3): 539–548
https://doi.org/10.1007/s10544-011-9523-9
33 Liu  W, Li  L, Wang  X, Ren  L, Wang  X, Wang  J, Tu  Q, Huang  X, Wang  J. An integrated microfluidic system for studying cell-microenvironmental interactions versatilely and dynamically. Lab on a Chip, 2010, 10(13): 1717–1724
https://doi.org/10.1039/c001049a
34 Zheng  C, Zhao  L, Chen  G, Zhou  Y, Pang  Y, Huang  Y. Quantitative study of the dynamic tumor-endothelial cell interactions through an integrated microfluidic coculture system. Analytical Chemistry, 2012, 84(4): 2088–2093
https://doi.org/10.1021/ac2032029
35 Brewer  B M, Shi  M, Edd  J F, Webb  D J, Li  D. A microfluidic cell co-culture platform with a liquid fluorocarbon separator. Biomedical Microdevices, 2014, 16: 311–323
36 Yeon  J H, Ryu  H R, Chung  M, Hu  Q P, Jeon  N L. In vitro formation and characterization of a perfusable three-dimensional tubular capillary network in microfluidic devices. Lab on a Chip, 2012, 12(16): 2815–2822
https://doi.org/10.1039/c2lc40131b
37 Businaro  L, De Ninno  A, Schiavoni  G, Lucarini  V, Ciasca  G, Gerardino  A, Belardelli  F, Gabriele  L, Mattei  F. Cross talk between cancer and immune cells: Exploring complex dynamics in a microfluidic environment. Lab on a Chip, 2013, 13(2): 229–239
https://doi.org/10.1039/C2LC40887B
38 Huang  Y, Agrawal  B, Clark  P A, Williams  J C, Kuo  J S. Evaluation of cancer stem cell migration using compartmentalizing microfluidic devices and live cell imaging. Journal of Visualized Experiments, 2011, 58: 3297
39 De Jong  J, Lammertink  R G, Wessling  M. Membranes and microfluidics: A review. Lab on a Chip, 2006, 6(9): 1125–1139
https://doi.org/10.1039/b603275c
40 Chen  Q, Wu  J, Zhuang  Q, Lin  X, Zhang  J, Lin  J M. Microfluidic isolation of highly pure embryonic stem cells using feeder-separated co-culture system. Scientific Reports, 2013, 3: 1–6
https://doi.org/10.1038/srep02433
41 Sip  C G, Bhattacharjee  N, Folch  A. Microfluidic transwell inserts for generation of tissue culture-friendly gradients in well plates. Lab on a Chip, 2014, 14(2): 302–314
https://doi.org/10.1039/C3LC51052B
42 Ostrovidov  S, Sakai  Y, Fujii  T. Integration of a pump and an electrical sensor into a membrane-based PDMS microbioreactor for cell culture and drug testing. Biomedical Microdevices, 2011, 13(5): 847–864
https://doi.org/10.1007/s10544-011-9555-1
43 VanDersarl  J J, Xu  A M, Melosh  N A. Rapid spatial and temporal controlled signal delivery over large cell culture areas. Lab on a Chip, 2011, 11(18): 3057–3063
https://doi.org/10.1039/c1lc20311h
44 Jang  K J, Suh  K Y. A multi-layer microfluidic device for efficient culture and analysis of renal tubular cells. Lab on a Chip, 2010, 10(1): 36–42
https://doi.org/10.1039/B907515A
45 Ramadan  Q, Jafarpoorchekab  H, Huang  C, Silacci  P, Carrara  S, Koklu  G, Ghaye  J, Ramsden  J, Ruffert  C, Vergeres  G, Gijs  M A. NutriChip: Nutrition analysis meets microfluidics. Lab on a Chip, 2013, 13(2): 196–203
https://doi.org/10.1039/C2LC40845G
46 Miura  S, Morimoto  Y, Takeuchi  S.Multi-layered placental barrier structure integrated with microfluidic channels. 2013 IEEE 26th International Conference.IEEE, 2013: 257–258
47 Lee  Y. Sudo  R, Komatsu  T, Miki  N, Mitaka  T, Ikeda  M, Tanishita  K. Pattern microfluidic hydrostatic deposition patterning for a confined hepatocyte-biliary  epithelial cell co-culture system. 2011 International Symposium. IEEE, 2011: 10–15
48 Chin  L K, Luo  K Q, Park  W. Double-layer hepatocyte tumor co-culture using hydrogel for drug affectivity and specificity analysis. 2012 IEEE 25th International Conference. IEEE, 2012: 808–811
49 Liu  Z, Shum  H C. Fabrication of uniform multi-compartment particles using microfludic electrospray technology for cell co-culture studies. Biomicrofluidics, 2013, 7(4): 044117
https://doi.org/10.1063/1.4817769
50 Shi  M, Majumdar  D, Gao  Y, Brewer  B M, Goodwin  C R, McLean  J A, Li  D, Webb  D J. Glia co-culture with neurons in microfluidic platforms promotes the formation and stabilization of synaptic contacts. Lab on a Chip, 2013, 13(15): 3008–3021
https://doi.org/10.1039/c3lc50249j
51 Sudo  R, Chung  S, Zervantonakis  I K, Vickerman  V, Toshimitsu  Y, Griffith  L G, Kamm  R D. Transport-mediated angiogenesis in 3D epithelial coculture. FASEB Journal, 2009, 23(7): 2155–2164
https://doi.org/10.1096/fj.08-122820
52 Purtscher  M, Rothbauer  M, Holnthoner  W, Redl  H, Ertl  P. Establishment of Vascular Networks in Biochips Using Co-cultures of Adipose Derived Stem Cells and Endothelial Cells in a 3D Fibrin Matrix. 6th European Conference of the International Federation for Medical and Biological Engineering. Springer International Publishing, 2015: 313–317
53 Chen  M B, Srigunapalan  S, Wheeler  A R, Simmons  C A. A 3D microfluidic platform incorporating methacrylated gelatin hydrogels to study physiological cardiovascular cell-cell interactions. Lab on a Chip, 2013, 13(13): 2591–2598
https://doi.org/10.1039/c3lc00051f
54 Chung  S, Sudo  R, Mack  P J, Wan  C R, Vickerman  V, Kamm  R D. Cell migration into scaffolds under co-culture conditions in a microfluidic platform. Lab on a Chip, 2009, 9(2): 269–275
https://doi.org/10.1039/B807585A
55 Ioannis  K, Zervantonakis  S K H A, Joseph  L, Charestd  J L. Three-dimensional microfluidic model for tumor cell intravasation and endothelial barrier function. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2012, 109(34): 13151–13520
56 Xie  Y, Zhang  W, Wang  L, Sun  K, Sun  Y, Jiang  X. A microchip-based model wound with multiple types of cells. Lab on a Chip, 2011, 11(17): 2819–2822
https://doi.org/10.1039/c0lc00562b
57 Ricci  C, Moroni  L, Danti  S. Cancer tissue engineering-new perspectives in understanding the biology of solid tumours-a critical review. OA Tissue Engineering, 2013, 1(1): 4
https://doi.org/10.13172/2052-9643-1-1-607
58 Ma  H, Liu  T, Qin  J, Lin  B. Characterization of the interaction between fibroblasts and tumor cells on a microfluidic co-culture device. Electrophoresis, 2010, 31(10): 1599–1605
https://doi.org/10.1002/elps.200900776
59 Hockemeyer  K, Janetopoulos  C, Terekhov  A, Hofmeister  W, Vilgelm  A, Costa  L, Wikswo  J, Richmond  A. Engineered three-dimensional microfluidic device for interrogating cell-cell interactions in the tumor microenvironment. Biomicrofluidics, 2014, 8(4): 044105
https://doi.org/10.1063/1.4890330
60 Ye  N, Qin  J, Shi  W, Liu  X, Lin  B. Cell-based high content screening using an integrated microfluidic device. Lab on a Chip, 2007, 7(12): 1696–1704
https://doi.org/10.1039/b711513j
61 Yang  Y, Yang  X, Zou  J, Jia  C, Hu  Y, Du  H, Wang  H. Evaluation of photodynamic therapy efficiency using an in vitro three-dimensional microfluidic breast cancer tissue model. Lab on a Chip, 2015, 15(3): 735–744
https://doi.org/10.1039/C4LC01065E
62 Agliari  E, Biselli  E, De Ninno  A, Schiavoni  G, Gabriele  L, Gerardino  A, Mattei  F, Barra  A, Businaro  L. Cancer-driven dynamics of immune cells in a microfluidic environment. Scientific Reports, 2014, 4: 1–15
https://doi.org/10.1038/srep06639
63 Hsu  T H, Kao  Y L, Lin  W L, Xiao  J L, Kuo  P L, Wu  C W, Liao  W Y, Lee  C H. The migration speed of cancer cells influenced by macrophages and myofibroblasts co-cultured in a microfluidic chip. Integrative Biology, 2012, 4(2): 177–182
https://doi.org/10.1039/C2IB00112H
64 Park  J Y, Kim  H O, Kim  K D, Kim  S K, Lee  S K, Jung  H. Monitoring the status of T-cell activation in a microfluidic system. Analyst (London), 2011, 136(13): 2831–2836
https://doi.org/10.1039/c1an15038c
65 Charwat  V, Rothbauer  M, Tedde  S F, Hayden  O, Bosch  J J, Muellner  P, Hainberger  R, Ertl  P. Monitoring dynamic interactions of tumor cells with tissue and immune cells in a lab-on-a-chip. Analytical Chemistry, 2013, 85(23): 11471–11478
https://doi.org/10.1021/ac4033406
66 Mu�oz-Pinedo   C, Green   D R, van den Berg  C A. Confocal restricted-height imaging of suspension cells (CRISC) in a PDMS microdevice during apoptosis. Lab on a Chip, 2005, 5(6): 628–633
https://doi.org/10.1039/b503770k
67 Li  P, Stratton  Z S, Dao  M, Ritz  J, Huang  T J. Probing circulating tumor cells in microfluidics. Lab on a Chip, 2013, 13(4): 602–609
https://doi.org/10.1039/c2lc90148j
68 Millet  L J, Stewart  M E, Sweedler  J V, Nuzzo  R G, Gillette  M U. Microfluidic devices for culturing primary mammalian neurons at low densities. Lab on a Chip, 2007, 7(8): 987–994
https://doi.org/10.1039/b705266a
69 Millet  L J, Stewart  M E, Nuzzo  R G, Gillette  M U. Guiding neuron development with planar surface gradients of substrate cues deposited using microfluidic devices. Lab on a Chip, 2010, 10(12): 1525–1535
https://doi.org/10.1039/c001552k
70 Wang  J, Ren  L, Li  L, Liu  W, Zhou  J, Yu  W, Tong  D, Chen  S. Microfluidics: A new cosset for neurobiology. Lab on a Chip, 2009, 9(5): 644–652
https://doi.org/10.1039/B813495B
71 Millet  L J, Gillette  M U. New perspectives on neuronal development via microfluidic environments. Trends in Neurosciences, 2012, 35(12): 752–761
https://doi.org/10.1016/j.tins.2012.09.001
72 Dinh  N D, Chiang  Y Y, Hardelauf  H, Baumann  J, Jackson  E, Waide  S, Sisnaiske  J, Frimat  J P, van Thriel  C, Janasek  D, Peyrin  J M, West  J. Microfluidic construction of minimalistic neuronal co-cultures. Lab on a Chip, 2013, 13(7): 1402–1412
https://doi.org/10.1039/c3lc41224e
73 Park  J, Koito  H, Li  J, Han  A. Microfluidic compartmentalized co-culture platform for CNS axon myelination research. Biomedical Microdevices, 2009, 11(6): 1145–1153
https://doi.org/10.1007/s10544-009-9331-7
74 Peyrin  J M, Deleglise  B, Saias  L, Vignes  M, Gougis  P, Magnifico  S, Betuing  S, Pietri  M, Caboche  J, Vanhoutte  P, Viovy  J L, Brugg  B. Axon diodes for the reconstruction of oriented neuronal networks in microfluidic chambers. Lab on a Chip, 2011, 11(21): 3663–3673
https://doi.org/10.1039/c1lc20014c
75 Kunze  A, Lengacher  S, Dirren  E, Aebischer  P, Magistretti  P J, Renaud  P. Astrocyte-neuron co-culture on microchips based on the model of SOD mutation to mimic ALS. Integrative Biology, 2013, 5(7): 964–975
https://doi.org/10.1039/c3ib40022k
76 Southam  K A, King  A E, Blizzard  C A, McCormack  G H, Dickson  T C. Microfluidic primary culture model of the lower motor neuron-neuromuscular junction circuit. Journal of Neuroscience Methods, 2013, 218(2): 164–169
https://doi.org/10.1016/j.jneumeth.2013.06.002
77 Kim  H J, Huh  D, Hamilton  G, Ingber  D E. Human gut-on-a-chip inhabited by microbial flora that experiences intestinal peristalsis-like motions and flow. Lab on a Chip, 2012, 12(12): 2165–2174
https://doi.org/10.1039/c2lc40074j
78 Kim  J, Hegde  M, Jayaraman  A. Co-culture of epithelial cells and bacteria for investigating host-pathogen interactions. Lab on a Chip, 2010, 10(1): 43–50
https://doi.org/10.1039/B911367C
79 Hong  J W, Song  S, Shin  J H. A novel microfluidic co-culture system for investigation of bacterial cancer targeting. Lab on a Chip, 2013, 13(15): 3033–3040
https://doi.org/10.1039/c3lc50163a
80 Huh  D, Hamilton  G A, Ingber  D E. From 3D cell culture to organs-on-chips. Trends in Cell Biology, 2011, 21(12): 745–754
https://doi.org/10.1016/j.tcb.2011.09.005
81 Kostadinova  R, Boess  F, Applegate  D, Suter  L, Weiser  T, Singer  T, Naughton  B, Roth  A. A long-term three dimensional liver co-culture system for improved prediction of clinically relevant drug-induced hepatotoxicity. Toxicology and Applied Pharmacology, 2013, 268(1): 1–16
https://doi.org/10.1016/j.taap.2013.01.012
82 Lee  S A, No  D Y, Kang  E, Ju  J, Kim  D S, Lee  S H. Spheroid-based three-dimensional liver-on-a-chip to investigate hepatocyte–hepatic stellate cell interactions and flow effects. Lab on a Chip, 2013, 13(18): 3529–3537
https://doi.org/10.1039/c3lc50197c
83 Jang  K J, Cho  H S, Kang  D H, Bae  W G, Kwon  T H, Suh  K Y. Fluid-shear-stress-induced translocation of aquaporin-2 and reorganization of actin cytoskeleton in renal tubular epithelial cells. Integrative Biology, 2011, 3(2): 134–141
https://doi.org/10.1039/C0IB00018C
84 Huh  D, Fujioka  H, Tung  Y C, Futai  N, Paine  R, Grotberg  J B, Takayama  S. Acoustically detectable cellular-level lung injury induced by fluid mechanical stresses in microfluidic airway systems. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2007, 104(48): 18886–18891
https://doi.org/10.1073/pnas.0610868104
85 Huh  D, Matthews  B D, Mammoto  A, Montoya-Zavala  M, Hsin  H Y, Ingber  D E. Reconstituting organ-level lung functions on a chip. Science, 2010, 328(5986): 1662–1668
https://doi.org/10.1126/science.1188302
86 Sung  J H, Esch  M B, Prot  J M, Long  C J, Smith  A, Hickman  J J, Shuler  M L. Microfabricated mammalian organ systems and their integration into models of whole animals and humans. Lab on a Chip, 2013, 13(7): 1201–1212
https://doi.org/10.1039/c3lc41017j
87 Chan  C Y, Huang  P H, Guo  F, Ding  X, Kapur  V, Mai  J D, Yuen  P K, Huang  T J. Accelerating drug discovery via organs-on-chips. Lab on a Chip, 2013, 13(24): 4697–4710
https://doi.org/10.1039/c3lc90115g
88 Choucha-Snouber  L, Aninat  C, Grsicom  L, Madalinski  G, Brochot  C, Poleni  P E, Razan  F, Guillouzo  C G, Legallais  C, Corlu  A, Leclerc  E. Investigation of ifosfamide nephrotoxicity induced in a liver-kidney co-culture biochip. Biotechnology and Bioengineering, 2013, 110(2): 597–608
https://doi.org/10.1002/bit.24707
89 Novik  E, Maguire  T J, Chao  P, Cheng  K, Yarmush  M L. A microfluidic hepatic coculture platform for cell-based drug metabolism studies. Biochemical Pharmacology, 2010, 79(7): 1036–1044
https://doi.org/10.1016/j.bcp.2009.11.010
90 Torisawa  Y S, Spina  C S, Mammoto  T, Mammoto  A, Weaver  J C, Tat  T, Collins  J J, Ingber  D E. Bone marrow-on-a-chip replicates hematopoietic niche physiology in vitro. Nature Methods, 2014, 11(6): 663–669
https://doi.org/10.1038/nmeth.2938
[1] Sainab Omar, Yang Yang, Jiawei Wang. A review on catalytic & non-catalytic bio-oil upgrading in supercritical fluids[J]. Front. Chem. Sci. Eng., 2021, 15(1): 4-17.
[2] Huan GU, Dacheng REN. Materials and surface engineering to control bacterial adhesion and biofilm formation: A review of recent advances[J]. Front Chem Sci Eng, 2014, 8(1): 20-33.
Viewed
Full text


Abstract

Cited

  Shared   
  Discussed