Please wait a minute...
Frontiers of Agricultural Science and Engineering

ISSN 2095-7505

ISSN 2095-977X(Online)

CN 10-1204/S

Postal Subscription Code 80-906

Front. Agr. Sci. Eng.    2017, Vol. 4 Issue (4) : 421-432    https://doi.org/10.15302/J-FASE-2017160
RESEARCH ARTICLE
Repeats in the transcribed regions: comprehensive characterization and comparison of Citrus spp.
Manosh Kumar BISWAS1, Christoph MAYER2, Xiuxin DENG1()
1. Key Laboratory of Horticultural Plant Biology, Ministry of Education/Huazhong Agricultural University, Wuhan 430070, China
2. Center of Molecular Biodiversity, Forschungsmuseum Alexander Koenig, Adenauerallee, Bonn 53113, Germany
 Download: PDF(1935 KB)   HTML
 Export: BibTeX | EndNote | Reference Manager | ProCite | RefWorks
Abstract

A large number of expressed sequences tags are available for Citrus spp., which provides an opportunity to understand genomic organization of the transcribed regions. Here, we report a detailed analysis of repetitive elements including tandem repeats (TRs) and transposable elements (TEs) in the transcribed region of the Citrus spp. On average, 22% of the expressed sequence tags (ESTs) contain TRs. The relative density of TR classes is highly taxon-specific. For instance, Citrus limonia has a high relative density of mononucleotide repeats, whereas dinucleotide repeats are rare. The proportions of 2–6, 7–30 and 31–50 bp repeats were almost identical in all studied species except for C. limonia and C. limettioides. We found that<1% of the citrus ESTs have a similarity with transposable elements. Transcriptional activity of transposable element families varied even within the same class of elements. A high proportion of transcriptional activity was observed for gypsy-like TEs compare to other TE classes. While TEs are relatively rare, TRs are abundant elements in ESTs of citrus. The high proportion of TRs that have a unit size longer than 6 bp raises the question about a possible functional or evolutionary role of these elements.

Keywords Citrus spp.      tandem repeats      transcribed region      transposable elements     
Corresponding Author(s): Xiuxin DENG   
Just Accepted Date: 10 May 2017   Online First Date: 26 May 2017    Issue Date: 10 December 2017
 Cite this article:   
Manosh Kumar BISWAS,Christoph MAYER,Xiuxin DENG. Repeats in the transcribed regions: comprehensive characterization and comparison of Citrus spp.[J]. Front. Agr. Sci. Eng. , 2017, 4(4): 421-432.
 URL:  
https://academic.hep.com.cn/fase/EN/10.15302/J-FASE-2017160
https://academic.hep.com.cn/fase/EN/Y2017/V4/I4/421
Species No. of sequences
analyzed*
Total length of sequences/bp CG content/% No. of TR containing EST/% No. of TE containing
EST/%
TR frequency
(TR/Mbp)
TE frequency
(TE/Mbp)
TR coverage/%
Citrus sinensis 70917 63428301 45.24 16153 (22.78) 1819 (2.56) 2439 29 6.89
Citrus clementina 24201 22433389 44.62 4930 (20.37) 546 (2.26) 2299 24 5.98
Citrus trifoliata 25388 22799411 46.47 6107 (24.05) 262 (1.03) 2646 11 7.86
Citrus reticulata 29422 26697646 47.51 6736 (22.89) 188 (0.64) 2410 7 6.91
Citrus unshiu 8328 4826095 41.92 861 (10.34) 77 (0.92) 1802 16 4.48
Citrus auruntium 10260 8244717 47.97 2112 (20.58) 30 (0.29) 2469 4 6.90
Citrus limonia 7895 6627791 44.80 1943 (24.61) 60 (0.76) 3030 9 8.32
Citrus latifolia 7173 6313905 48.56 1635 (22.79) 53 (0.74) 2488 8 6.69
Citrus aurantifolia 5977 5093917 49.46 1574 (26.33) 13 (0.22) 3003 3 8.64
Citrus limettioides 7049 6393162 44.62 2257 (32.02) 18 (0.26) 3401 3 9.05
Citrus paradisi 4358 2549165 41.78 385 (8.83) 17 (0.39) 1608 7 4.48
Total 200968 175407499 45.72 44693 (22.24) 3083 (1.53) 2488 18 6.93 ?
Tab.1  List of Citrus spp. and the number of sequences analyzed in the present study together with basic characteristics of these sequences
Fig.1  Density and length characteristics of tandem repeats (TRs) in the transcribed regions of 11 Citrus spp. (a) TR density versus size of the expressed sequence tag (EST) data set; (b) mean repeat length versus size of the EST data set; (c) relative frequency of TR classes.
Species Microsatellite (1–6 bp) Minisatellite (7–100 bp) Satellite (>100)
NL ANRL Var. Den. Cov. NL ANRL Var. Den. Cov. NL ANRL Var. Den. Cov.
Citrus sinensis 1164 13 502 26611 2.66 1271 3 31609 40558 4.06 4 3 246 1707 0.17
C. clementina 1254 10 484 25738 2.57 1039 3 11414 31960 3.20 5 3 94 2079 0.21
C. trifoliata 1242 14 485 30582 3.06 1396 3 15612 45889 4.59 5 3 101 2120 0.21
C. reticulata 1076 10 491 23002 2.30 1327 3 17248 44461 4.45 3 3 91 1602 0.16
C. unshiu 956 7 405 18391 1.84 840 2 2873 24257 2.43 6 2 29 2134 0.21
C. auruntium 1086 9 457 22786 2.28 1379 3 6865 42890 4.29 6 3 51 3282 0.33
C. limonia 1550 17 394 36353 3.64 1474 3 4942 44002 4.40 6 3 41 2858 0.29
C. latifolia 1073 11 406 22791 2.28 1414 3 5245 42758 4.28 3 2 20 1359 0.14
C. aurantifolia 1291 11 410 29151 2.92 1703 3 5178 55022 5.50 5 3 24 2189 0.22
C. limettioides 1690 14 399 35493 3.55 1710 3 5325 53125 5.31 4 3 24 1873 0.19
C. paradise 866 6 338 5720 1.64 736 2 1511 7413 2.10 7 3 18 1703 0.32
Over all 2.65 4.12 0.19
Tab.2  Summary statistics of the tandem repeat in the transcribed regions of 11 citrus genomes
Repeat type C. sinensis C. clementina C. trifoliata C. reticulata C. unshiu C. auruntium C. limonia C. latifolia C. aurantifolia C. limettioides C. paradisi Min Max
A 197.1 175.1 217.2 112.4 83.9 101.4 500.3 157.3 130.2 481.9 55.3 55.3 500.3
C 82.1 89.2 99.3 96.7 3.3 78.1 230.8 70.3 107.6 248.4 4.7 3.3 248.4
AC 4.7 5.5 4.4 3.6 6.0 3.9 2.9 3.3 3.1 1.3 7.1 1.3 7.1
AG 17.7 28.1 16.4 17.6 27.1 14.4 7.4 11.4 16.3 13.6 24.7 7.4 28.1
AT 9.4 9.2 9.5 7.5 13.9 6.5 8.0 6.5 11.2 4.1 14.5 4.1 14.5
CG 0.4 0.1 0.4 0.3 0.0 0.7 0.0 0.2 1.0 0.0 0.0 0.0 1.0
AAC 3.2 6.2 3.6 3.0 4.1 3.0 1.7 1.9 4.5 0.8 4.7 0.8 6.2
AAG 12.2 17.3 11.4 11.3 14.9 10.9 8.8 8.4 10.0 8.9 14.5 8.4 17.3
AAT 9.6 12.4 8.2 7.0 11.8 7.4 5.4 4.1 6.7 4.5 14.5 4.1 14.5
ACC 3.4 7.4 3.5 2.9 2.7 3.5 0.6 2.9 3.7 2.7 4.3 0.6 7.4
ACG 1.2 3.2 1.7 0.9 2.3 1.0 0.6 0.5 1.2 1.1 0.8 0.5 3.2
ACT 0.4 1.1 0.6 0.3 0.6 0.4 0.3 1.0 0.6 0.2 1.6 0.2 1.6
AGC 8.0 11.5 6.9 8.5 6.8 10.2 3.8 7.3 8.2 6.1 11.4 3.8 11.5
AGG 3.5 6.9 3.0 4.5 5.2 3.2 0.8 1.4 2.9 3.4 2.4 0.8 6.9
ATC 5.1 8.2 5.0 4.2 7.5 3.8 4.8 2.1 5.7 3.6 8.2 2.1 8.2
CCG 2.2 7.0 3.4 2.7 3.3 2.9 1.5 2.1 1.6 1.1 3.1 1.1 7.0
Tab.3  Density (TRs/Mbp) of different TR types from mono- to tri-nucleotides repeats for EST data sets of all 11 Citrus spp.
Fig.2  Comparative features of the distribution of TRs in the transcribed regions of 11 citrus species. (a) Number of Tandem Repeats (TRs) per Mbp; (b) number of different units found per Mbp genome; (c) average no of repeat units per locus; (d) genomic density of TRs in the three different unit size ranges 1–6 bp, 7–10 bp and 11–50 bp for 11 Citrus spp.
Fig.3  (a) Number of expressed sequence tags (ESTs) similar to transposable element (TE) families for 11 Citrus spp.; (b) number of ESTs similar to TE families in the collection of all ESTs from 11 Citrus spp.; (c) percentage distribution of EST among major class of TEs; (d) dot-plot correlation between TE copy number and number of EST similar to the TE.
Fig.4  Phylogenetic analysis of long-terminal repeat-retrotransposon sequences in citrus expressed sequence tag and genomic sequences. (a) Phylogenetic tree based on copia-like sequences; (b) phylogenetic tree based on gypsy-like sequences.
1 Niranjan N, Navajas-Pérez  R, Mihai P,  Alam M, Ming  R, Andrew H P,  Steven L S. Genome-wide analysis of repetitive elements in papaya. Tropical Plant Biology, 2008, 1(3): 191–201
2 Mayer C, Leese  F, Tollrian R. Genome-wide analysis of tandem repeats in Daphnia pulex—a comparative approach. BMC Genomics, 2010, 11(1): 277
https://doi.org/10.1186/1471-2164-11-277 pmid: 20433735
3 Li Y C, Korol  A B, Fahima  T, Nevo E. Microsatellites within genes: structure, function, and evolution. Molecular Biology and Evolution, 2004, 21(6): 991–1007
https://doi.org/10.1093/molbev/msh073 pmid: 14963101
4 Ugarković D,  Plohl M. Variation in satellite DNA profiles--causes and effects. EMBO Journal, 2002, 21(22): 5955–5959
https://doi.org/10.1093/emboj/cdf612 pmid: 12426367
5 Camacho J P, Sharbel  T F, Beukeboom  L W. B-chromosome evolution. Philosophical Transactions of the Royal Society of London.  Series  B,  Biological  Sciences,  2000,  355(1394):  163–178
https://doi.org/10.1098/rstb.2000.0556 pmid: 10724453
6 Buard J, Jeffreys  A J. Big, bad minisatellites. Nature Genetics, 1997, 15(4): 327–328
https://doi.org/10.1038/ng0497-327 pmid: 9090372
7 Kashi Y, King  D, Soller M. Simple sequence repeats as a source of quantitative genetic variation. Trends in Genetics, 1997, 13(2): 74–78
https://doi.org/10.1016/S0168-9525(97)01008-1 pmid: 9055609
8 Schlötterer C. Evolutionary dynamics of microsatellite DNA. Chromosoma, 2000, 109(6): 365–371
https://doi.org/10.1007/s004120000089 pmid: 11072791
9 Li Y C, Korol  A B, Fahima  T, Beiles A,  Nevo E. Microsatellites: genomic distribution, putative functions and mutational mechanisms: a review. Molecular Ecology, 2002, 11(12): 2453–2465
https://doi.org/10.1046/j.1365-294X.2002.01643.x pmid: 12453231
10 Riley D E, Krieger  J N. Diverse eukaryotic transcripts suggest short tandem repeats have cellular functions. Biochemical and Biophysical Research Communications, 2002, 298(4): 581–586
https://doi.org/10.1016/S0006-291X(02)02509-3 pmid: 12408991
11 Riley D E, Krieger  J N. Short tandem repeats are associated with diverse mRNAs encoding membrane-targeted proteins. BioEssays, 2004, 26(4): 434–444
https://doi.org/10.1002/bies.20001 pmid: 15057941
12 Kashi Y, King  D G. Simple sequence repeats as advantageous mutators in evolution. Trends in Genetics , 2006, 22(5): 253–259
https://doi.org/10.1016/j.tig.2006.03.005 pmid: 16567018
13 Dieringer D, Schlötterer  C. Two distinct modes of microsatellite mutation processes: evidence from the complete genomic sequences of nine species. Genome Research, 2003, 13(10): 2242–2251
https://doi.org/10.1101/gr.1416703 pmid: 14525926
14 Ellegren H. Microsatellites: simple sequences with complex evolution. Nature Reviews Genetics, 2004, 5(6): 435–445
https://doi.org/10.1038/nrg1348 pmid: 15153996
15 Jeffreys A J, Neumann  R, Wilson V. Repeat unit sequence variation in minisatellites: a novel source of DNA polymorphism for studying variation and mutation by single molecule analysis. Cell, 1990, 60(3): 473–485
https://doi.org/10.1016/0092-8674(90)90598-9 pmid: 2406022
16 Bonhomme F, Rivals  E, Orth A,  Grant G R,  Jeffreys A J,  Bois P R. Species-wide distribution of highly polymorphic minisatellite markers suggests past and present genetic exchanges among house mouse subspecies. Genome Biology, 2007, 8(5): R80
https://doi.org/10.1186/gb-2007-8-5-r80 pmid: 17501990
17 Qiu L, Yang  C, Tian B,  Yang J B,  Liu A. Exploiting EST databases for the development and characterization of EST-SSR markers in castor bean (Ricinus communis L.). BMC Plant Biology, 2010, 10(1): 278
https://doi.org/10.1186/1471-2229-10-278 pmid: 21162723
18 Studer B, Kölliker  R, Muylle H,  Asp T, Frei  U, Roldán-Ruiz I, Barre P,  Tomaszewski C,  Meally H,  Barth S,  Skøt L,  Armstead I P,  Dolstra O,  Lübberstedt T. EST-derived SSR markers used as anchor loci for the construction of a consensus linkage map in ryegrass (Lolium spp.). BMC Plant Biology, 2010, 10(1): 177
https://doi.org/10.1186/1471-2229-10-177 pmid: 20712870
19 Vicient C M. Transcriptional activity of transposable elements in maize. BMC Genomics, 2010, 11(1): 601
https://doi.org/10.1186/1471-2164-11-601 pmid: 20973992
20 Kidwell M G, Lisch  D. Transposable elements as sources of variation in animals and plants. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1997, 94(15): 7704–7711
https://doi.org/10.1073/pnas.94.15.7704 pmid: 9223252
21 Wicker T, Sabot  F, Hua-Van A,  Bennetzen J L,  Capy P, Chalhoub  B, Flavell A,  Leroy P,  Morgante M,  Panaud O,  Paux E, SanMiguel  P, Schulman A H. A unified classification system for eukaryotic transposable elements. Nature Reviews Genetics, 2007, 8(12): 973–982
https://doi.org/10.1038/nrg2165 pmid: 17984973
22 Biswas M K, Chai  L, Amar M H,  Zhang X,  Deng X X. Comparative analysis of genetic diversity in Citrus germplasm collection using AFLP, SSAP, SAMPL and SSR markers. Scientia Horticulturae, 2011, 129(4): 798–803
https://doi.org/10.1016/j.scienta.2011.06.015
23 Biswas M K, Xu  Q, Deng X. Utility of RAPD, ISSR, IRAP and REMAP markers for the genetic analysis of Citrus spp. Scientia Horticulturae, 2010, 124(2): 254–261
https://doi.org/10.1016/j.scienta.2009.12.013
24 Talon M, Gmitter Jr.  F G.Citrus genomics. International Journal of Plant Genomics, 2008, 2008: 528361
https://doi.org/10.1155/2008/528361 pmid: 18509486
25 Benson G. Tandem repeats finder: a program to analyze DNA sequences. Nucleic Acids Research, 1999, 27(2): 573–580
https://doi.org/10.1093/nar/27.2.573 pmid: 9862982
26 Volfovsky N, Haas  B J, Salzberg  S L. A clustering method for repeat analysis in DNA sequences. Genome Biology, 2001, 2(8): RESEARCH0027
27 Macas J, Mészáros  T, Nouzová M. PlantSat: a specialized database for plant satellite repeats. Bioinformatics, 2002, 18(1): 28–35
https://doi.org/10.1093/bioinformatics/18.1.28 pmid: 11836208
28 Wicker T, Matthews  D E, Keller  B. TREP: a database for Triticeae repetitive  elements.  Trends  in  Plant  Science,  2002,  7(12):  561–562
https://doi.org/10.1016/S1360-1385(02)02372-5
29 Messing J, Bharti  A K, Karlowski  W M, Gundlach  H, Kim H R,  Yu Y, Wei  F, Fuks G,  Soderlund C A,  Mayer K F,  Wing R A. Sequence composition and genome organization of maize. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2004, 101(40):14349–14354
30 Jurka J, Kapitonov  V V, Pavlicek  A, Klonowski P,  Kohany O,  Walichiewicz J. Repbase Update, a database of eukaryotic repetitive elements. Cytogenetic and Genome Research, 2005, 110(1–4): 462–467
https://doi.org/10.1159/000084979 pmid: 16093699
31 Meyers B C, Tingey  S V, Morgante  M. Abundance, distribution, and transcriptional activity of repetitive elements in the maize genome. Genome Research, 2001, 11(10): 1660–1676
https://doi.org/10.1101/gr.188201 pmid: 11591643
32 Du J, Tian  Z, Hans C S,  Laten H M,  Cannon S B,  Jackson S A,  Shoemaker R C,  Ma J. Evolutionary conservation, diversity and specificity of LTR-retrotransposons in flowering plants: insights from genome-wide analysis and multi-specific comparison. Plant Journal, 2010, 63(4): 584–598
https://doi.org/10.1111/j.1365-313X.2010.04263.x pmid: 20525006
33 Chen C, Zhou  P, Choi Y A,  Huang S,  Gmitter F G Jr. Mining and characterizing microsatellites from citrus ESTs. Theoretical and Applied Genetics, 2006, 112(7): 1248–1257
https://doi.org/10.1007/s00122-006-0226-1 pmid: 16474971
34 Cheng Y, de Vicente  M C, Meng  H, Guo W,  Tao N, Deng  X. A set of primers for analyzing chloroplast DNA diversity in Citrus and related genera. Tree Physiology, 2005, 25(6): 661–672
https://doi.org/10.1093/treephys/25.6.661 pmid: 15805086
35 Mayer C. Phobos: a tandem repeat search tool. Distributed by the author, 2007
36 Jurka J, Pethiyagoda  C. Simple repetitive DNA sequences from primates: compilation and analysis. Journal of Molecular Evolution, 1995, 40(2): 120–126
https://doi.org/10.1007/BF00167107 pmid: 7699718
37 Tamura K, Peterson  D, Peterson N,  Stecher G,  Nei M, Kumar  S. MEGA5:  molecular  evolutionary  genetics analysis  using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods. Molecular Biology and Evolution, 2011, 28(10): 2731–2739
https://doi.org/10.1093/molbev/msr121 pmid: 21546353
38 Kim T S, Booth  J G, Gauch  H G Jr, Sun  Q, Park J,  Lee Y H,  Lee K. Simple sequence repeats in Neurospora crassa: distribution, polymorphism and evolutionary inference. BMC Genomics, 2008, 9(1): 31
https://doi.org/10.1186/1471-2164-9-31 pmid: 18215294
39 Tautz D, Renz  M. Simple sequences are ubiquitous repetitive components of eukaryotic genomes. Nucleic Acids Research, 1984, 12(10): 4127–4138
https://doi.org/10.1093/nar/12.10.4127 pmid: 6328411
40 Tóth G, Gáspári  Z, Jurka J. Microsatellites in different eukaryotic genomes: survey and analysis. Genome Research, 2000, 10(7): 967–981
https://doi.org/10.1101/gr.10.7.967 pmid: 10899146
41 Victoria F C, da Maia  L C, de Oliveira  A C. In silico comparative analysis of SSR markers in plants. BMC Plant Biology, 2011, 11(1): 15
https://doi.org/10.1186/1471-2229-11-15 pmid: 21247422
42 La Rota M, Kantety  R V, Yu  J K, Sorrells  M E. Nonrandom distribution and frequencies of genomic and EST-derived microsatellite markers in rice, wheat, and barley. BMC Genomics, 2005, 6(1): 23
https://doi.org/10.1186/1471-2164-6-23 pmid: 15720707
43 Lawson M J, Zhang  L. Distinct patterns of SSR distribution in the Arabidopsis thaliana and rice genomes. Genome Biology, 2006, 7(2): R14
https://doi.org/10.1186/gb-2006-7-2-r14 pmid: 16507170
44 Crane C F. Patterned sequence in the transcriptome of vascular plants. BMC Genomics, 2007, 8(1): 173
https://doi.org/10.1186/1471-2164-8-173 pmid: 17573970
45 Feschotte C, Jiang  N, Wessler S R. Plant transposable elements: where genetics meets genomics. Nature Reviews Genetics, 2002, 3(5): 329–341
https://doi.org/10.1038/nrg793 pmid: 11988759
46 Tanurdzic M, Vaughn  M W, Jiang  H, Lee T J,  Slotkin R K,  Sosinski B,  Thompson W F,  Doerge R W,  Martienssen R A. Epigenomic consequences of immortalized plant cell suspension culture. PLoS Biology, 2008, 6(12): 2880–2895
https://doi.org/10.1371/journal.pbio.0060302 pmid: 19071958
47 Picault N, Chaparro  C, Piegu B,  Stenger W,  Formey D,  Llauro C,  Descombin J,  Sabot F,  Lasserre E,  Meynard D,  Guiderdoni E,  Panaud O. Identification of an active LTR retrotransposon in rice. Plant Journal, 2009, 58(5): 754–765
https://doi.org/10.1111/j.1365-313X.2009.03813.x pmid: 19187041
48 Pouteau S, Huttner  E, Grandbastien M A,  Caboche M. Specific expression of the tobacco Tnt1 retrotransposon in protoplasts. EMBO Journal, 1991, 10(7): 1911–1918
pmid: 1710981
49 Hirochika H. Activation of tobacco retrotransposons during tissue culture. EMBO Journal, 1993, 12(6): 2521–2528
pmid: 8389699
50 Mhiri C, Morel  J B, Vernhettes  S, Casacuberta J M,  Lucas H,  Grandbastien M A. The promoter of the tobacco Tnt1 retrotransposon is induced by wounding and by abiotic stress. Plant Molecular Biology, 1997, 33(2): 257–266
https://doi.org/10.1023/A:1005727132202 pmid: 9037144
51 Ramallo E, Kalendar  R, Schulman A H,  Martínez-Izquierdo J A. Reme1, a Copia retrotransposon in melon, is transcriptionally induced by UV light. Plant Molecular Biology, 2008, 66(1–2): 137–150
https://doi.org/10.1007/s11103-007-9258-4 pmid: 18034313
52 Asíns M J,  Monforte A J,  Mestre P F,  Carbonell E A. Citrus and Prunuscopia-like retrotransposons. TAG Theoretical and Applied Genetics, 1999, 99(3–4): 503–510
https://doi.org/10.1007/s001220051263 pmid: 22665184
53 Bernet G P, Asíns  M J. Identification and genomic distribution of gypsy like retrotransposons in Citrus and Poncirus. Theoretical and Applied Genetics, 2003, 108(1): 121–130
https://doi.org/10.1007/s00122-003-1382-1 pmid: 12937896
54 Xu Q, Chen  L L, Ruan  X, Chen D,  Zhu A, Chen  C, Bertrand D,  Jiao W B,  Hao B H,  Lyon M P,  Chen J, Gao  S, Xing F,  Lan H, Chang  J W, Ge  X, Lei Y,  Hu Q, Miao  Y, Wang L,  Xiao S, Biswas  M K, Zeng  W, Guo F,  Cao H, Yang  X, Xu X W,  Cheng Y J,  Xu J, Liu  J H, Luo  O J, Tang  Z, Guo W W,  Kuang H,  Zhang H Y,  Roose M L,  Nagarajan N,  Deng X X,  Ruan Y. The draft genome of sweet orange (Citrus sinensis). Nature Genetics, 2013, 45(1): 59–66
https://doi.org/10.1038/ng.2472 pmid: 23179022
55 Rabinowicz P D, Schutz K, Dedhia N,  Yordan C, Parnell L D, Stein L,  McCombie W R,  Martienssen R A. Differential methylation of genes and retrotransposons facilitates shotgun sequencing of the maize genome. Nature Genetics, 1999, 23(3): 305–308
[1] FASE-17160-OF-BMK_suppl_1 Download
Viewed
Full text


Abstract

Cited

  Shared   
  Discussed