Please wait a minute...
Frontiers in Biology

ISSN 1674-7984

ISSN 1674-7992(Online)

CN 11-5892/Q

Front. Biol.    2017, Vol. 12 Issue (2) : 83-93    https://doi.org/10.1007/s11515-017-1445-3
REVIEW
Tcf1 at the crossroads of CD4+ and CD8+ T cell identity
Jodi A. Gullicksrud1,2, Qiang Shan1(), Hai-Hui Xue1,2()
1. Department of Microbiology, Carver College of Medicine, University of Iowa, Iowa City, IA 52242, USA
2. Interdisciplinary Immunology Graduate Program, Carver College of Medicine, University of Iowa, Iowa City, IA 52242, USA
 Download: PDF(660 KB)   HTML
 Export: BibTeX | EndNote | Reference Manager | ProCite | RefWorks
Abstract

Transcription factors and DNA/histone modification enzymes work in concert to establish and maintain cell identity. CD4+ and CD8+ T cells are key players in cellular immunity with distinct functions. Recent studies offer novel insights into how their identities are established in the thymus and maintained in the periphery during immune responses. During thymic maturation, Thpok, HDAC1 and HDAC2 guard CD4+ T cells from activation of CD8+ cytotoxic genes, and Tcf1 and Lef1 utilize their intrinsic HDAC activity to shut down CD4+ lineage-associated genes in CD8+ T cells. In activated CD4+ T cells, Tcf1 and Lef1 act upstream of the Bcl6-Blimp1 axis to direct differentiation of follicular helper T (Tfh) cells, and prevent diversion of Tfh to IL-17-producing cells. In parallel, T-bet, together with Eomes or Blimp1, ensures proper induction of the cytotoxic program in CD8+ effectors elicited by acute infection, and prevents generation of pathogenic, IL-17-producing CD8+ effector T cells. Antigen persistence due to chronic viral infection leads to CD8+ T cell exhaustion. A portion of exhausted CD8+ T cells has the capacity to activate the Tfh program in a Tcf1-dependent manner. Those Tfh-like CD8+ T cells exhibit enhanced proliferative capacity in response to PD-1 blockage therapy and are more effective in curtailing viral replication. Thus, dissecting the molecular aspects of T cell identity, during development and immune responses, may lead to new therapies for treating autoimmunity, tumors, and persistent infections.

Keywords Tcf1      Lef1      HDAC      CD4+ T cells      CD8+ T cells      cell identity     
Corresponding Author(s): Qiang Shan,Hai-Hui Xue   
Online First Date: 20 March 2017    Issue Date: 14 April 2017
 Cite this article:   
Jodi A. Gullicksrud,Qiang Shan,Hai-Hui Xue. Tcf1 at the crossroads of CD4+ and CD8+ T cell identity[J]. Front. Biol., 2017, 12(2): 83-93.
 URL:  
https://academic.hep.com.cn/fib/EN/10.1007/s11515-017-1445-3
https://academic.hep.com.cn/fib/EN/Y2017/V12/I2/83
Fig.1  Diagram showing the functional structure of Tcf1 and Lef1 proteins. βBD, β-catenin binding domain; HDAC, histone deacetylase activity domain; HMG, high mobility group DNA binding domain. The numbers denote boundaries of highlighted functional domains based on the full length Tcf1 protein.
Fig.2  Tcf1 and Lef1 regulate CD4+ lineage choice by acting upstream of Thpok. TCRβ+ post-select thymocytes were analyzed in control, Tcf7–/–, Lef1–/–, and Tcf7–/–Lef1–/– mice on β2m–/– background. (A) Immature (top) and mature (bottom) post-select thymocytes were analyzed for CD4 and CD8 expression. Immature cells contained DP, CD4+CD8lo intermediates, CD4+ and CD8+ subsets, and mature cells contain CD4+, CD8+ subsets, and an additional CD4+CD8+ subset in Tcf7–/– and Tcf7–/–Lef1–/– mice. Percentage of each subset is marked in representative contour plots from≥3 experiments (n≥5). (B) The expression of Thpok and Runx3 genes in TCRβ+ post-select DP thymocytes sorted from β2m–/– and Tcf7–/–Lef1–/–β2m–/– mice, as determined by qRT-PCR. The expression of each gene in β2m–/– control cells is set as 1, and that in Tcf7–/–Lef1–/–β2m–/– cells was normalized accordingly. Runx3d denotes a Runx3 transcript from CD8+ lineage-specific distal promoter. Data are means±s.d. from 3 experiments (n = 3 for β2m–/–, and n = 6 for Tcf7–/–Lef1–/–β2m–/–). p values were determined by Student’s t-test.
Fig.3  Conserved regulatory circuits upstream of the Tfh program. Regulatory roles of each transcription factor/regulator (in boxes) are observed in both CD4+ Tfh cells (generated in response to acute infection) and Tfh-like CXCR5+CD8+ cells (generated in response to chronic viral infection). Arrows denote positive regulation, lines ending in bars denote negative regulation, and dotted line marks indirect regulation.
1 Banga R, Procopio  F A, Noto  A, Pollakis G ,  Cavassini M ,  Ohmiti K ,  Corpataux J M ,  de Leval L ,  Pantaleo G ,  Perreau M  (2016). PD-1(+) and follicular helper T cells are responsible for persistent HIV-1 transcription in treated aviremic individuals. Nat Med, 22(7): 754–761
https://doi.org/10.1038/nm.4113
2 Boucheron N, Tschismarov  R, Goschl L ,  Moser M A ,  Lagger S ,  Sakaguchi S ,  Winter M ,  Lenz F, Vitko  D, Breitwieser F P ,  Müller L ,  Hassan H ,  Bennett K L ,  Colinge J ,  Schreiner W ,  Egawa T ,  Taniuchi I ,  Matthias P ,  Seiser C ,  Ellmeier W  (2014). CD4(+) T cell lineage integrity is controlled by the histone deacetylases HDAC1 and HDAC2. Nat Immunol, 15(5): 439–448
https://doi.org/10.1038/ni.2864
3 Cannarile M A ,  Lind N A ,  Rivera R ,  Sheridan A D ,  Camfield K A ,  Wu B B ,  Cheung K P ,  Ding Z, Goldrath  A W (2006). Transcriptional regulator Id2 mediates CD8+ T cell immunity. Nat Immunol, 7(12): 1317–1325
https://doi.org/10.1038/ni1403
4 Choi Y S, Gullicksrud  J A, Xing  S, Zeng Z ,  Shan Q, Li  F, Love P E ,  Peng W, Xue  H H, Crotty  S (2015). LEF-1 and TCF-1 orchestrate TFH differentiation by regulating differentiation circuits upstream of the transcriptional repressor Bcl6. Nat Immunol, 16(9): 980–990
https://doi.org/10.1038/ni.3226
5 Cobaleda C, Jochum  W, Busslinger M  (2007). Conversion of mature B cells into T cells by dedifferentiation to uncommitted progenitors. Nature, 449(7161): 473–477
https://doi.org/10.1038/nature06159
6 Collins A, Littman  D R, Taniuchi  I (2009). RUNX proteins in transcription factor networks that regulate T-cell lineage choice. Nat Rev Immunol, 9(2): 106–115
https://doi.org/10.1038/nri2489
7 Crotty S (2014). T follicular helper cell differentiation, function, and roles in disease. Immunity, 41(4): 529–542
https://doi.org/10.1016/j.immuni.2014.10.004
8 De Obaldia M E ,  Bhandoola A  (2015). Transcriptional regulation of innate and adaptive lymphocyte lineages. Annu Rev Immunol, 33(1): 607–642
https://doi.org/10.1146/annurev-immunol-032414-112032
9 Fukazawa Y, Lum  R, Okoye A A ,  Park H, Matsuda  K, Bae J Y ,  Hagen S I ,  Shoemaker R ,  Deleage C ,  Lucero C ,  Morcock D ,  Swanson T ,  Legasse A W ,  Axthelm M K ,  Hesselgesser J ,  Geleziunas R ,  Hirsch V M ,  Edlefsen P T ,  Piatak M ,  Estes J D ,  Lifson J D ,  Picker L J  (2015). B cell follicle sanctuary permits persistent productive simian immunodeficiency virus infection in elite controllers. Nat Med, 21(2): 132–139
https://doi.org/10.1038/nm.3781
10 Germar K, Dose  M, Konstantinou T ,  Zhang J ,  Wang H, Lobry  C, Arnett K L ,  Blacklow S C ,  Aifantis I ,  Aster J C ,  Gounari F  (2011). T-cell factor 1 is a gatekeeper for T-cell specification in response to Notch signaling. Proc Natl Acad Sci USA, 108(50): 20060–20065
https://doi.org/10.1073/pnas.1110230108
11 Giese K, Cox  J, Grosschedl R  (1992). The HMG domain of lymphoid enhancer factor 1 bends DNA and facilitates assembly of functional nucleoprotein structures. Cell, 69(1): 185–195
https://doi.org/10.1016/0092-8674(92)90129-Z
12 Harty J T, Badovinac  V P (2008). Shaping and reshaping CD8+ T-cell memory. Nat Rev Immunol, 8(2): 107–119
https://doi.org/10.1038/nri2251
13 Hatzi K, Nance  J P, Kroenke  M A, Bothwell  M, Haddad E K ,  Melnick A ,  Crotty S  (2015). BCL6 orchestrates Tfh cell differentiation via multiple distinct mechanisms. J Exp Med, 212(4): 539–553
https://doi.org/10.1084/jem.20141380
14 He R, Hou  S, Liu C ,  Zhang A ,  Bai Q, Han  M, Yang Y ,  Wei G, Shen  T, Yang X ,  Xu L, Chen  X, Hao Y ,  Wang P, Zhu  C, Ou J ,  Liang H ,  Ni T, Zhang  X, Zhou X ,  Deng K, Chen  Y, Luo Y ,  Xu J, Qi  H, Wu Y ,  Ye L (2016). Follicular CXCR5-expressing CD8+ T cells curtail chronic viral infection. Nature, 537(7620): 412–428
https://doi.org/10.1038/nature19317
15 Im S J, Hashimoto  M, Gerner M Y ,  Lee J, Kissick  H T, Burger  M C, Shan  Q, Hale J S ,  Lee J, Nasti  T H, Sharpe  A H, Freeman  G J, Germain  R N, Nakaya  H I, Xue  H H, Ahmed  R (2016). Defining CD8+ T cells that provide the proliferative burst after PD-1 therapy. Nature, 537(7620): 417–421
https://doi.org/10.1038/nature19330
16 Intlekofer A M ,  Banerjee A ,  Takemoto N ,  Gordon S M ,  Dejong C S ,  Shin H, Hunter  C A, Wherry  E J, Lindsten  T, Reiner S L  (2008). Anomalous type 17 response to viral infection by CD8+ T cells lacking T-bet and eomesodermin. Science, 321(5887): 408–411
https://doi.org/10.1126/science.1159806
17 Ioannidis V, Beermann  F, Clevers H ,  Held W (2001). The beta-catenin–TCF-1 pathway ensures CD4(+)CD8(+) thymocyte survival. Nat Immunol, 2(8): 691–697
https://doi.org/10.1038/90623
18 Ji Y, Pos  Z, Rao M ,  Klebanoff C A ,  Yu Z, Sukumar  M, Reger R N ,  Palmer D C ,  Borman Z A ,  Muranski P ,  Wang E, Schrump  D S, Marincola  F M, Restifo  N P, Gattinoni  L (2011). Repression of the DNA-binding inhibitor Id3 by Blimp-1 limits the formation of memory CD8+ T cells. Nat Immunol, 12(12): 1230–1237
https://doi.org/10.1038/ni.2153
19 Joshi N S, Cui  W, Chandele A ,  Lee H K ,  Urso D R ,  Hagman J ,  Gapin L ,  Kaech S M  (2007). Inflammation directs memory precursor and short-lived effector CD8(+) T cell fates via the graded expression of T-bet transcription factor. Immunity, 27(2): 281–295
https://doi.org/10.1016/j.immuni.2007.07.010
20 Kallies A, Xin  A, Belz G T ,  Nutt S L  (2009). Blimp-1 transcription factor is required for the differentiation of effector CD8(+) T cells and memory responses. Immunity, 31(2): 283–295
https://doi.org/10.1016/j.immuni.2009.06.021
21 Kee B L (2009). E and ID proteins branch out. Nat Rev Immunol, 9(3): 175–184
https://doi.org/10.1038/nri2507
22 Khaitan A, Unutmaz  D (2011). Revisiting immune exhaustion during HIV infection. Curr HIV/AIDS Rep, 8(1): 4–11
https://doi.org/10.1007/s11904-010-0066-0
23 Leong Y A, Chen  Y, Ong H S ,  Wu D, Man  K, Deleage C ,  Minnich M ,  Meckiff B J ,  Wei Y, Hou  Z, Zotos D ,  Fenix K A ,  Atnerkar A ,  Preston S ,  Chipman J G ,  Beilman G J ,  Allison C C ,  Sun L, Wang  P, Xu J ,  Toe J G ,  Lu H K ,  Tao Y, Palendira  U, Dent A L ,  Landay A L ,  Pellegrini M ,  Comerford I ,  McColl S R ,  Schacker T W ,  Long H M ,  Estes J D ,  Busslinger M ,  Belz G T ,  Lewin S R ,  Kallies A ,  Yu D (2016). CXCR5(+) follicular cytotoxic T cells control viral infection in B cell follicles. Nat Immunol, 17(10): 1187–1196
https://doi.org/10.1038/ni.3543
24 Li P, Burke  S, Wang J ,  Chen X, Ortiz  M, Lee S C ,  Lu D, Campos  L, Goulding D ,  Ng B L ,  Dougan G ,  Huntly B ,  Gottgens B ,  Jenkins N A ,  Copeland N G ,  Colucci F ,  Liu P (2010). Reprogramming of T cells to natural killer-like cells upon Bcl11b deletion. Science, 329(5987): 85–89
https://doi.org/10.1126/science.1188063
25 Liu X, Chen  X, Zhong B ,  Wang A, Wang  X, Chu F ,  Nurieva R I ,  Yan X, Chen  P, van der Flier L G, Nakatsukasa H ,  Neelapu S S ,  Chen W, Clevers  H, Tian Q ,  Qi H, Wei  L, Dong C  (2014). Transcription factor achaete-scute homologue 2 initiates follicular T-helper-cell development. Nature, 507(7493): 513–518
https://doi.org/10.1038/nature12910
26 Ma J, Wang  R, Fang X ,  Ding Y, Sun  Z (2011). Critical role of TCF-1 in repression of the IL-17 gene. PLoS One, 6(9): e24768
https://doi.org/10.1371/journal.pone.0024768
27 Malhotra N, Narayan  K, Cho O H ,  Sylvia K E ,  Yin C, Melichar  H, Rashighi M ,  Lefebvre V ,  Harris J E ,  Berg L J ,  Kang J (2013). A network of high-mobility group box transcription factors programs innate interleukin-17 production. Immunity, 38(4): 681–693
https://doi.org/10.1016/j.immuni.2013.01.010
28 Mielke L A, Groom  J R, Rankin  L C, Seillet  C, Masson F ,  Putoczki T ,  Belz G T  (2013). TCF-1 controls ILC2 and NKp46+RORγt+ innate lymphocyte differentiation and protection in intestinal inflammation. J Immunol, 191(8): 4383–4391
https://doi.org/10.4049/jimmunol.1301228
29 Mingueneau M, Kreslavsky  T, Gray D ,  Heng T, Cruse  R, Ericson J ,  Bendall S ,  Spitzer M H ,  Nolan G P ,  Kobayashi K ,  von Boehmer H ,  Mathis D ,  Benoist C ,  Best A J ,  Knell J ,  Goldrath A ,  Jojic V ,  Koller D ,  Shay T, Regev  A, Cohen N ,  Brennan P ,  Brenner M ,  Kim F, Rao  T N, Wagers  A, Heng T ,  Ericson J ,  Rothamel K ,  Ortiz-Lopez A ,  Mathis D ,  Benoist C ,  Bezman N A ,  Sun J C ,  Min-Oo G ,  Kim C C ,  Lanier L L ,  Miller J ,  Brown B ,  Merad M ,  Gautier E L ,  Jakubzick C ,  Randolph G J ,  Monach P ,  Blair D A ,  Dustin M L ,  Shinton S A ,  Hardy R R ,  Laidlaw D ,  Collins J ,  Gazit R ,  Rossi D J ,  Malhotra N ,  Sylvia K ,  Kang J, Kreslavsky  T, Fletcher A ,  Elpek K ,  Bellemare-Pelletier A ,  Malhotra D ,  Turley S  (2013). The transcriptional landscape of alphabeta T cell differentiation. Nat Immunol, 14(6): 619–632
https://doi.org/10.1038/ni.2590
30 Mittrucker H W ,  Visekruna A ,  Huber M  (2014). Heterogeneity in the differentiation and function of CD8(+) T cells. Arch Immunol Ther Exp (Warsz), 62(6): 449–458
https://doi.org/10.1007/s00005-014-0293-y
31 Mucida D, Husain  M M, Muroi  S, van Wijk F ,  Shinnakasu R ,  Naoe Y, Reis  B S, Huang  Y, Lambolez F ,  Docherty M ,  Attinger A ,  Shui J W ,  Kim G, Lena  C J, Sakaguchi  S, Miyamoto C ,  Wang P, Atarashi  K, Park Y ,  Nakayama T ,  Honda K ,  Ellmeier W ,  Kronenberg M ,  Taniuchi I ,  Cheroutre H  (2013). Transcriptional reprogramming of mature CD4(+) helper T cells generates distinct MHC class II-restricted cytotoxic T lymphocytes. Nat Immunol, 14(3): 281–289
https://doi.org/10.1038/ni.2523
32 Muroi S, Naoe  Y, Miyamoto C ,  Akiyama K ,  Ikawa T ,  Masuda K ,  Kawamoto H ,  Taniuchi I  (2008). Cascading suppression of transcriptional silencers by ThPOK seals helper T cell fate. Nat Immunol, 9(10): 1113–1121
https://doi.org/10.1038/ni.1650
33 Natoli G (2010). Maintaining cell identity through global control of genomic organization. Immunity, 33(1): 12–24
https://doi.org/10.1016/j.immuni.2010.07.006
34 Paley M A, Kroy  D C, Odorizzi  P M, Johnnidis  J B, Dolfi  D V, Barnett  B E, Bikoff  E K, Robertson  E J, Lauer  G M, Reiner  S L, Wherry  E J (2012). Progenitor and terminal subsets of CD8+ T cells cooperate to contain chronic viral infection. Science, 338(6111): 1220–1225
https://doi.org/10.1126/science.1229620
35 Pearce E L, Mullen  A C, Martins  G A, Krawczyk  C M, Hutchins  A S, Zediak  V P, Banica  M, DiCioccio C B ,  Gross D A ,  Mao C A ,  Shen H, Cereb  N, Yang S Y ,  Lindsten T ,  Rossant J ,  Hunter C A ,  Reiner S L  (2003). Control of effector CD8+ T cell function by the transcription factor Eomesodermin. Science, 302(5647): 1041–1043
https://doi.org/10.1126/science.1090148
36 Quigley M F, Gonzalez  V D, Granath  A, Andersson J ,  Sandberg J K  (2007). CXCR5+ CCR7- CD8 T cells are early effector memory cells that infiltrate tonsil B cell follicles. Eur J Immunol, 37(12): 3352–3362
https://doi.org/10.1002/eji.200636746
37 Reis B S, Rogoz  A, Costa-Pinto F A ,  Taniuchi I ,  Mucida D  (2013). Mutual expression of the transcription factors Runx3 and ThPOK regulates intestinal CD4(+) T cell immunity. Nat Immunol, 14(3): 271–280
https://doi.org/10.1038/ni.2518
38 Rui J, Liu  H, Zhu X ,  Cui Y, Liu  X (2012). Epigenetic silencing of CD8 genes by ThPOK-mediated deacetylation during CD4 T cell differentiation. J Immunol, 189(3): 1380–1390
https://doi.org/10.4049/jimmunol.1201077
39 Rutishauser R L ,  Martins G A ,  Kalachikov S ,  Chandele A ,  Parish I A ,  Meffre E ,  Jacob J ,  Calame K ,  Kaech S M  (2009). Transcriptional repressor Blimp-1 promotes CD8(+) T cell terminal differentiation and represses the acquisition of central memory T cell properties. Immunity, 31(2): 296–308
https://doi.org/10.1016/j.immuni.2009.05.014
40 Shaw L A, Belanger  S, Omilusik K D ,  Cho S, Scott-Browne  J P, Nance  J P, Goulding  J, Lasorella A ,  Lu L F ,  Crotty S ,  Goldrath A W  (2016). Id2 reinforces TH1 differentiation and inhibits E2A to repress TFH differentiation. Nat Immunol, 17(7): 834–843
https://doi.org/10.1038/ni.3461
41 Shin H, Blackburn  S D, Intlekofer  A M, Kao  C, Angelosanto J M ,  Reiner S L ,  Wherry E J  (2009). A role for the transcriptional repressor Blimp-1 in CD8(+) T cell exhaustion during chronic viral infection. Immunity, 31(2): 309–320
https://doi.org/10.1016/j.immuni.2009.06.019
42 Shy B R, Wu  C I, Khramtsova  G F, Zhang  J Y, Olopade  O I, Goss  K H, Merrill  B J (2013). Regulation of Tcf7l1 DNA binding and protein stability as principal mechanisms of Wnt/beta-catenin signaling. Cell Reports, 4(1): 1–9
https://doi.org/10.1016/j.celrep.2013.06.001
43 Smale S T (2003). The establishment and maintenance of lymphocyte identity through gene silencing. Nat Immunol, 4(7): 607–615
https://doi.org/10.1038/ni0703-607
44 Staal F J, Sen  J M (2008). The canonical Wnt signaling pathway plays an important role in lymphopoiesis and hematopoiesis. Eur J Immunol, 38: 1788–1794
https://doi.org/10.1002/eji.200738118
45 Steinke F C, Xue  H H (2014). From inception to output, Tcf1 and Lef1 safeguard development of T cells and innate immune cells. Immunol Res, 59(1-3): 45–55
https://doi.org/10.1007/s12026-014-8545-9
46 Steinke F C, Yu  S, Zhou X ,  He B, Yang  W, Zhou B ,  Kawamoto H ,  Zhu J, Tan  K, Xue H H  (2014). TCF-1 and LEF-1 act upstream of Th-POK to promote the CD4(+) T cell fate and interact with Runx3 to silence Cd4 in CD8(+) T cells. Nat Immunol, 15(7): 646–656
https://doi.org/10.1038/ni.2897
47 Taniuchi I, Ellmeier  W (2011). Transcriptional and epigenetic regulation of CD4/CD8 lineage choice. Adv Immunol, 110: 71–110
https://doi.org/10.1016/B978-0-12-387663-8.00003-X
48 Utzschneider D T ,  Charmoy M ,  Chennupati V ,  Pousse L ,  Ferreira D P ,  Calderon-Copete S ,  Danilo M ,  Alfei F ,  Hofmann M ,  Wieland D ,  Pradervand S ,  Thimme R ,  Zehn D, Held  W (2016). T Cell Factor 1-Expressing memory-like CD8(+) T cells sustain the immune response to chronic viral infections. Immunity, 45(2): 415–427
https://doi.org/10.1016/j.immuni.2016.07.021
49 Vacchio M S, Bosselut  R (2016). What happens in the thymus does not stay in the thymus: How T cells recycle the CD4+-CD8+ lineage commitment transcriptional circuitry to control their function. J Immunol, 196(12): 4848–4856
https://doi.org/10.4049/jimmunol.1600415
50 Vacchio M S, Wang  L, Bouladoux N ,  Carpenter A C ,  Xiong Y ,  Williams L C ,  Wohlfert E ,  Song K D ,  Belkaid Y ,  Love P E ,  Bosselut R  (2014). A ThPOK-LRF transcriptional node maintains the integrity and effector potential of post-thymic CD4+ T cells. Nat Immunol, 15(10): 947–956
https://doi.org/10.1038/ni.2960
51 Weber B N, Chi  A W, Chavez  A, Yashiro-Ohtani Y ,  Yang Q, Shestova  O, Bhandoola A  (2011). A critical role for TCF-1 in T-lineage specification and differentiation. Nature, 476(7358): 63–68
https://doi.org/10.1038/nature10279
52 Wherry E J, Kurachi  M (2015). Molecular and cellular insights into T cell exhaustion. Nat Rev Immunol, 15(8): 486–499
https://doi.org/10.1038/nri3862
53 Williams M A, Bevan  M J (2007). Effector and memory CTL differentiation. Annu Rev Immunol, 25(1): 171–192
https://doi.org/10.1146/annurev.immunol.25.022106.141548
54 Wu, T., Shin,  H.M., Moseman, E.A. ,  Ji, Y., Huang,  B., Harly, C. ,  Sen, J.M. ,  Berg, L.J. ,  Gattinoni, L. ,  McGavern, D.B. ,  Schwartzberg P L  (2015). TCF1 is required for the T follicular helper cell response to viral infection. Cell Rep, 12(12): 2099–2110
55 Xin A, Masson  F, Liao Y ,  Preston S ,  Guan T, Gloury  R, Olshansky M ,  Lin J X ,  Li P, Speed  T P, Smyth  G K, Ernst  M, Leonard W J ,  Pellegrini M ,  Kaech S M ,  Nutt S L ,  Shi W, Belz  G T, Kallies  A (2016). A molecular threshold for effector CD8(+) T cell differentiation controlled by transcription factors Blimp-1 and T-bet. Nat Immunol, 17(4): 422–432
https://doi.org/10.1038/ni.3410
56 Xing S, Li  F, Zeng Z ,  Zhao Y, Yu  S, Shan Q ,  Li Y, Phillips  F C, Maina  P K, Qi  H H, Liu  C, Zhu J ,  Pope R M ,  Musselman C A ,  Zeng C, Peng  W, Xue H H  (2016). Tcf1 and Lef1 transcription factors establish CD8(+) T cell identity through intrinsic HDAC activity. Nat Immunol, 17(6): 695–703
https://doi.org/10.1038/ni.3456
57 Xu L, Cao  Y, Xie Z ,  Huang Q ,  Bai Q, Yang  X, He R ,  Hao Y, Wang  H, Zhao T ,  Fan Z, Qin  A, Ye J ,  Zhou X, Ye  L, Wu Y  (2015). The transcription factor TCF-1 initiates the differentiation of TFH cells during acute viral infection. Nat Immunol, 16(9): 991–999
https://doi.org/10.1038/ni.3229
58 Xue H H, Zhao  D M (2012). Regulation of mature T cell responses by the Wnt signaling pathway. Ann N Y Acad Sci, 1247(1): 16–33
https://doi.org/10.1111/j.1749-6632.2011.06302.x
59 Yang C Y, Best  J A, Knell  J, Yang E ,  Sheridan A D ,  Jesionek A K ,  Li H S ,  Rivera R R ,  Lind K C ,  D’Cruz L M ,  Watowich S S ,  Murre C ,  Goldrath A W  (2011). The transcriptional regulators Id2 and Id3 control the formation of distinct memory CD8+ T cell subsets. Nat Immunol, 12(12): 1221–1229
https://doi.org/10.1038/ni.2158
60 Yang J, Lin  X, Pan Y ,  Wang J, Chen  P, Huang H ,  Xue H H ,  Gao J, Zhong  X P (2016). Critical roles of mTOR complex 1 and 2 for T follicular helper cell differentiation and germinal center responses. eLife, 5. pii: e17936 
https://doi.org/10.7554/eLife.17936
61 Yang X J, Seto  E (2008). The Rpd3/Hda1 family of lysine deacetylases: from bacteria and yeast to mice and men. Nat Rev Mol Cell Biol, 9(3): 206–218
https://doi.org/10.1038/nrm2346
62 Ye B, Liu  X, Li X ,  Kong H, Tian  L, Chen Y  (2015). T-cell exhaustion in chronic hepatitis B infection: current knowledge and clinical significance. Cell Death Dis, 6(3): e1694
https://doi.org/10.1038/cddis.2015.42
63 Yi F, Pereira  L, Hoffman J A ,  Shy B R ,  Yuen C M ,  Liu D R ,  Merrill B J  (2011). Opposing effects of Tcf3 and Tcf1 control Wnt stimulation of embryonic stem cell self-renewal. Nat Cell Biol, 13(7): 762–770
https://doi.org/10.1038/ncb2283
64 Yu S, Zhou  X, Steinke F C ,  Liu C, Chen  S C, Zagorodna  O, Jing X ,  Yokota Y ,  Meyerholz D K ,  Mullighan C G ,  Knudson C M ,  Zhao D M ,  Xue H H  (2012). The TCF-1 and LEF-1 transcription factors have cooperative and opposing roles in T cell development and malignancy. Immunity, 37(5): 813–826
https://doi.org/10.1016/j.immuni.2012.08.009
65 Yui M A, Rothenberg  E V (2014). Developmental gene networks: a triathlon on the course to T cell identity. Nat Rev Immunol, 14(8): 529–545
https://doi.org/10.1038/nri3702
66 Zeng H, Cohen  S, Guy C ,  Shrestha S ,  Neale G ,  Brown S A ,  Cloer C ,  Kishton R J ,  Gao X, Youngblood  B, Do M ,  Li M O ,  Locasale J W ,  Rathmell J C ,  Chi H (2016). mTORC1 and mTORC2 kinase signaling and glucose metabolism drive follicular helper T cell differentiation. Immunity, 45(3): 540–554
https://doi.org/10.1016/j.immuni.2016.08.017
67 Zhao D M, Yu  S, Zhou X ,  Haring J S ,  Held W, Badovinac  V P, Harty  J T, Xue  H H (2010). Constitutive activation of Wnt signaling favors generation of memory CD8 T cells. J Immunol, 184(3): 1191–1199
https://doi.org/10.4049/jimmunol.0901199
68 Zhou X, Xue  H H (2012). Cutting edge: generation of memory precursors and functional memory CD8+ T cells depends on T cell factor-1 and lymphoid enhancer-binding factor-1. J Immunol, 189(6): 2722–2726
https://doi.org/10.4049/jimmunol.1201150
69 Zhou X, Yu  S, Zhao D M ,  Harty J T ,  Badovinac V P ,  Xue H H  (2010). Differentiation and persistence of memory CD8(+) T cells depend on T cell factor 1. Immunity, 33(2): 229–240
https://doi.org/10.1016/j.immuni.2010.08.002
70 Zhu J, Yamane  H, Paul W E  (2010). Differentiation of effector CD4 T cell populations. Annu Rev Immunol, 28(1): 445–489
https://doi.org/10.1146/annurev-immunol-030409-101212
Viewed
Full text


Abstract

Cited

  Shared   
  Discussed